Подписаться на журнал
Подать статью

Выпуск журнала "Вестник ЦНИИТ"
Номер 2, выпуск 11 за 2020 год

ВЕСТНИК ЦНИИТ №2 (11) 2020

Информация о журнале: Читать
Главный редактор: А. Эргешов
Год основания: 2017
ISSN (Print): Просмотреть
Сайт издательства: http://critub.ru
http://tb-bulletin.ru

Вернуться в архив

Содержание

1)К 60-ЛЕТИЮ СО ДНЯ РОЖДЕНИЯ ИГОРЯ ЕВГЕНЬЕВИЧА ТЮРИНА5 ОПИСАНИЕ
2)

ДИАГНОСТИКА ВНЕБОЛЬНИЧНОЙ ПНЕВМОНИИ У ЛИЦ С ХРОНИЧЕСКОЙ СЕРДЕЧНОЙ НЕДОСТАТОЧНОСТЬЮ: ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ И РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Бобылев А.А., Рачина С.А., Авдеев С.Н., Козлов Р.С.

7 ОПИСАНИЕ
3)

ГЕПАТОТОКСИЧЕСКИЕ РЕАКЦИИ У БОЛЬНЫХ ТУБЕРКУЛЕЗОМ НА ОСНОВНЫЕ ПРОТИВОТУБЕРКУЛЕЗНЫЕ ХИМИОПРЕПАРАТЫ. СОСТОЯНИЕ ПРОБЛЕМЫ

Авербах М.М.

22 ОПИСАНИЕ
4)

ПОЛУЧЕНИЕ MYCOBACTERIUM TUBERCULOSIS ПОСЛЕ ФАГОЦИТОЗА НЕЙТРОФИЛАМИ IN VIVO ДЛЯ ГЕНЕТИЧЕСКОГО И ФУНКЦИОНАЛЬНОГО АНАЛИЗА

Майоров К.Б., Григоров А.С., Кондратьева Е.В., Ажикина Т.Л., Апт А.С.

30 ОПИСАНИЕ
5)

ОСОБЕННОСТИ ОБОСТРЕНИЙ У ПАЦИЕНТОВ С РАЗЛИЧНЫМИ ФЕНОТИПАМИ ХРОНИЧЕСКОЙ ОБСТРУКТИВНОЙ БОЛЕЗНИ ЛЕГКИХ

Кудрявцева Э.З., Макарьянц Н.Н., Никитина Л.Ю.

36 ОПИСАНИЕ
6)

ХИРУРГИЧЕСКОЕ ЛЕЧЕНИЕ БРОНХОПЛЕВРАЛЬНЫХ ОСЛОЖНЕНИЙ ПОСЛЕ ПНЕВМОНЭКТОМИИ У БОЛЬНЫХ ТУБЕРКУЛЕЗОМ

Гиллер Д.Б., Кесаев О.Ш., Эргешов А.Э., Короев В.В., Глотов А.А., Гаджиева П.Г., Глотов Е.М., Имагожев Я.Г., Пехтусов В.А., Нематов О.Н.

49 ОПИСАНИЕ
7)

ПРОФИЛАКТИКА МЕДИАСТИНАЛЬНЫХ ГРЫЖ ПОСЛЕ ПНЕВМОНЭКТОМИЙ С ПОМОЩЬЮ ИНТРАОПЕРАЦИОННОЙ ПЛАСТИКИ ПЕРЕДНЕГО СРЕДОСТЕНИЯ У БОЛЬНЫХ ДЕСТРУКТИВНЫМИ ФОРМАМИ ТУБЕРКУЛЕЗА ЛЕГКИХ И ИЗУЧЕНИЕ ЕЕ ВЛИЯНИЯ НА ФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ ПОКАЗАТЕЛИ

Эргешова А.Э., Красникова Е.В., Пенаги Р.А., Салихов Б.У., Читорелидзе Г.В., Тарасов Р.В., Багиров М.А.

60 ОПИСАНИЕ
8)

РАЗЛИЧНЫЕ АСПЕКТЫ ВНУТРЕННЕЙ КАРТИНЫ БОЛЕЗНИ У ПОДРОСТКОВ, БОЛЬНЫХ ТУБЕРКУЛЕЗОМ ОРГАНОВ ДЫХАНИЯ

Золотова Н.В., Ахтямова А.А.

68 ОПИСАНИЕ
9)

РЕЗУЛЬТАТЫ ИММУНОДИАГНОСТИКИ ТУБЕРКУЛЕЗА У ПАЦИЕНТОВ ПУЛЬМОНОЛОГИЧЕСКОГО ОТДЕЛЕНИЯ ОБЩЕСОМАТИЧЕСКОГО СТАЦИОНАРА

Небесная Е.Ю., Бахшиева Л.И., Багишева Н.В., Дубровская И.И., Зенкова Л.А., Мордык Д.И., Моисеева М.В.

74 ОПИСАНИЕ
10)

КОМПЛЕКСНЫЙ ПОДХОД К ЛЕЧЕНИЮ ТУБЕРКУЛЕЗА ЛЕГКИХ У РЕБЕНКА ИЗ СЕМЕЙНОГО ОЧАГА ИНФЕКЦИИ С МНОЖЕСТВЕННОЙ ЛЕКАРСТВЕННОЙ УСТОЙЧИВОСТЬЮ ВОЗБУДИТЕЛЯ И ПОЗДНИМ ВЫЯВЛЕНИЕМ

Губкина М.Ф., Стерликова С.С., Петракова И.Ю., Хохлова Ю.Ю., Юхименко Н.В.

82 ОПИСАНИЕ
11)

КУЛЬТУРАЛЬНЫЙ МЕТОД ИССЛЕДОВАНИЯ МИКОБАКТЕРИЙ. ДЕКОНТАМИНАЦИЯ ОБРАЗЦОВ ДИАГНОСТИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА

Севастьянова Э.В., Ларионова Е.Е., Андриевская И.Ю., Смирнова Т.Г.

89 ОПИСАНИЕ
12)

ПАМЯТИ ВИКТОРА ПЕТРОВИЧА ФИЛИППОВА

100 ОПИСАНИЕ

К 60‑ЛЕТИЮ СО ДНЯ РОЖДЕНИЯ ИГОРЯ ЕВГЕНЬЕВИЧА ТЮРИНА

Статья 1.Страница 5.
НАЗВАНИЕ СТАТЬИ:

К 60‑ЛЕТИЮ СО ДНЯ РОЖДЕНИЯ ИГОРЯ ЕВГЕНЬЕВИЧА ТЮРИНА

АВТОРЫ: 
ОПИСАНИЕ:

Игорь Евгеньевич Тюрин родился в 1960 г. в Ленинграде.

В 1983 г. окончил лечебный факультет Первого Ленинградского Медицинского института им. акад. И.П. Павлова. Сразу после окончания института И.Е. Тюрин работал врачом-интерном, а затем врачом-рентгенологом в рентгенорадиологическом отделении Ленинградской областной клинической больницы. В 1986 г. он был принят в аспирантуру при кафедре рентгенологии и радиологии Военно- медицинской академии. После успешной защиты кандидатской диссертации по рентгенологическим исследованиям легких в реанимации в 1989 г. И.Е. Тюрин стал ассистентом кафедры. В 1997 г. он защитил докторскую диссертацию на тему: ≪Компьютерная томография в диагностике воспалительных заболеваний легких≫ и в 1991 г. был избран доцентом, а в 1997 г. – профессором кафедры рентгенологии и радиологии Военно-медицинской академии.

С 1998 по 2003 гг. И.Е. Тюрин работал в должности профессора кафедры лучевой диагностики и лучевой терапии Санкт-Петербургской государственной медицинской академии им. И.М. Мечникова, одновременно возглавляя отделение лучевой диагностики Ленинградской областной клинической больницы и исполняя обязанности главного специалиста-рентгенолога МЗ Правительства Ленинградской области. В 2001 г. И.Е. Тюрин был назначен главным внештатным специалистом по лучевой диагностике мэрии Санкт-Петербурга.

С 2003 г. И.Е. Тюрин работает в Москве, где был избран на должность заведующего вновь созданной кафедры лучевой диагностики и медицинской физики Российской медицинской академии последипломного образования. Одновременно И.Е. Тюрин стал ведущим научным сотрудником Российского онкологического научного центра им. Н.Н. Блохина. В 2015 г. кафедра была объединена с кафедрой лучевой диагностики РМАПО, а в 2016 г. получила новое название – кафедра рентгенологии и радиологии. И.Е. Тюрин ведет разностороннюю диагностическую консультативную работу, с 2018 г. он по совместительству является главным научным сотрудником ФГБНУ ≪ЦНИИТ≫.

И.Е. Тюрин – член редколлегий ряда медицинских журналов, в том числе ≪Медицинская визуализация≫, ≪Медицинская радиология и радиационная безопасность≫, ≪Интервенционная диагностика и лечение≫, ≪Лучевая диагностика и терапия≫, ≪Вестник ЦНИИТ≫, с 2014 г. он – главный редактор журнала ≪Вестник рентгенологии и радиологии≫.

И.Е. Тюрин является членом Европейского общества радиологов (ESR), членом Северо-Американского общества радиологов (RSNA), в 2014 г. избран членом исполнительного комитета Европейского общества торакальной визуализации (ESTI). И.Е. Тюрин неоднократно выступал в роли локального организатора школ ESOR в России.

В 2010 г. И.Е. Тюрин организовал и возглавил национальное ≪Общество торакальных радиологов≫, с 2011 г. является членом президиума Российской ассоциации радиологов, в 2016 г. избран вице-президентом этого общества. Был президентом двух конгрессов РАР, международного научного форума ≪Медицинская диагностика≫, Международного конгресса по торакальной радиологии.

И.Е. Тюрин является автором/соавтором более 250 научных работ, в том числе 8 монографий и пособий для врачей, клинических рекомендаций, методических указаний. Под его руководством защищено пять кандидатских и одна докторская диссертация.

В 2010 г. профессор И.Е. Тюрин назначен главным внештатным специалистом лучевым диагностом Минздрава России. Одновременно он является членом экспертного совета и руководителем профильной комиссии по лучевой диагностике при Минздраве России, председателем аттестационной комиссии Минздрава России по профилю ≪лучевая и инструментальная диагностика≫, председателем этического комитета Минздрава России в сфере обращения медицинских изделий.

И.Е. Тюрин снискал заслуженное уважение коллег и многочисленных учеников, он является экспертом высочайшего класса в области торакальной радиологии, обладает широкой эрудицией и охотно делится своими богатыми знаниями с коллегами, оставаясь при этом скромным и приветливым человеком.

Ученики и коллеги, работающие в ФГБНУ ≪ЦНИИТ≫, поздравляют И.Е. Тюрина с 60‑летием и желают ему крепкого здоровья, многочисленных новых успехов и долгих лет плодотворной работы на благо отечественной медицины и медицинской науки.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ: 
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА:

Юбилей

ДЛЯ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ: 

ДИАГНОСТИКА ВНЕБОЛЬНИЧНОЙ ПНЕВМОНИИ У ЛИЦ С ХРОНИЧЕСКОЙ СЕРДЕЧНОЙ НЕДОСТАТОЧНОСТЬЮ: ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ И РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Статья 2.Страница 7.
НАЗВАНИЕ СТАТЬИ:

ДИАГНОСТИКА ВНЕБОЛЬНИЧНОЙ ПНЕВМОНИИ У ЛИЦ С ХРОНИЧЕСКОЙ СЕРДЕЧНОЙ НЕДОСТАТОЧНОСТЬЮ: ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ И РЕЗУЛЬТАТЫ СОБСТВЕННЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

DOI: 10.7868/S2587667820020028

АВТОРЫ:

Бобылев А.А.1,2, Рачина С.А.3, Авдеев С.Н.4,5, Козлов Р.С.1,2

1 ФГОУ ВО «Смоленский государственный медицинский университет» Минздрава России,

г. Смоленск, Россия

2 Межрегиональная ассоциация по клинической микробиологии и антимикробной химиотерапии,

г. Смоленск, Россия

3 ФГАОУ ВО «Российский университет дружбы народов» Министерства образования России,

г. Москва, Россия

4 ФГАОУ ВО «Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова» Минздрава России, г. Москва, Россия

5 ФГБУ «Научно-исследовательский институт пульмонологии» ФМБА России, г. Москва, Россия

ОПИСАНИЕ:

Внебольничная пневмония (ВП) – одно из наиболее часто встречающихся в развитых странах инфекционных заболеваний. Хроническая сердечная недостаточность (ХСН) является независимым фактором риска неблагоприятного течения и прогноза при ВП. Диагностика ВП у лиц с ХСН сопряжена с объективными трудностями. Классические проявления недостаточности кровообращения, включающие одышку, утомляемость, тахикардию, тахипноэ, хрипы в легких при аускультации, скопление жидкости в плевральной полости могут быть обусловлены и течением пневмонии. Наряду с этим клиническая картина заболевания у пожилых пациентов чрезвычайно разнообразна и может меняться от классической (манифестной) до атипичной (стертой). Рентгенологическое исследование органов грудной клетки (ОГК) по-прежнему является стандартным методом диагностики пневмонии. В то же время применение рутинной рентгенографии у лиц старших возрастных групп, в том числе с ХСН, имеет технические ограничения, а также характеризуется недостаточной специфичностью. Внедрение мультиспиральной компьютерной томографии (МСКТ) ОГК позволило существенно повысить эффективность диагностики заболевания, однако данный метод не может рассматриваться в качестве исходной альтернативы рентгенографии. Сложности этиологической верификации пневмонии обусловлены возрастными анатомо-физиологическими особенностями рассматриваемого контингента больных, у которых возможности культурального исследования респираторных образцов ограничены. Невыраженность системного воспалительного ответа у пожилых пациентов способствует снижению эффективности рутинных лабораторных тестов, в первую очередь, общего анализа крови. Описанные выше проблемы клинической, рентгенологической, микробиологической и лабораторной диагностики ВП у лиц с ХСН предполагают использование дополнительных методов, одним из которых является определение сывороточных биомаркеров воспаления, к которым относятся С-реактивный белок (С-РБ), прокальцитонин (ПКТ), интерлейкин-6 (ИЛ-6), фактор некроза опухоли α (ФНОα) и некоторые другие. Данные белки являются достаточно чувствительными и специфичными индикаторами воспаления, продукция которых в организме резко повышается при развитии инфекционного процесса различной этиологии (в том числе при ВП). Менее выраженная гиперсекреция этих биомаркеров выявлена также при развитии и прогрессировании недостаточности кровообращения. Одним из наиболее эффективных в диагностике инфекций нижних дыхательных путей у лиц с ХСН является С-РБ: его определение позволяет повысить уровень диагностики ВП и существенно снизить частоту назначения антибактериальной терапии без ухудшения прогноза.

Поступила 26.01.2020 г.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ:
  1. Бобылев А.А., Рачина С.А., Авдеев С.Н., Козлов Р.С. Внебольничная пневмония у лиц c хронической сердечной недостаточностью: особенности клинических проявлений и роль сывороточных биомаркеров в диагностике // Пульмонология. – 2019. – Т. 29, № 4. – С. 391–402.
  2. Бобылев А.А., Рачина С.А., Авдеев С.Н., Козлов Р.С., Младов В.В. Определение С-реактивного белка при внебольничной пневмонии на фоне хронической сердечной недостаточности как критерий назначения антибактериальной терапии // Кардиология. – 2019. – Т. 59, № 2 S. – С. 40–46.
  3. Бобылев А.А., Рачина С.А., Авдеев С.Н., Козлов Р.С., Сухорукова М.В., Яцыщина С.Б., Елькина М.А., Юданова Т.А. Этиология внебольничной пневмонии у лиц с хронической сердечной недостаточностью // Пульмонология. – 2019. – Т. 29, № 3. – С. 293–301.
  4. Бобылев А.А., Рачина С.А., Авдеев С.Н., Младов В.В. Перспективы применения биомаркеров для диагностики внебольничной пневмонии на фоне хронической сердечной недостаточности // Клиническая фармакология и терапия. – 2018. – Т. 27, № 3. – С. 16–25.
  5. Вельков В.В. С-реактивный белок – структура, функция, методы определения, клиническая значимость // Лаб. медицина. – 2006. – № 8. – С. 1–7.
  6. Мареев В.Ю., Агеев Ф.Т., Арутюнов Г.П., Коротеев А.В., Мареев Ю.В., Овчинников А.Г., Беленков Ю.Н., Васюк Ю.А., Галявич А.С., Гарганеева А.А., Гиляревский С.Р., Глезер М.Г., Козиолова Н.А., Коц Я.И., Лопатин Ю.М., Мартынов А.И., Моисеев В.С., Ревишвили А.Ш., Ситникова М.Ю., Скибицкий В.В., Соколов Е.И., Сторожаков Г.И., Фомин И.В., Чесникова А.И., Шляхто Е.В. Национальные рекомендации ОССН, РКО и РНМОТ по диагностике и лечению ХСН (четвертый пересмотр) // Сердечная Недостаточность. – 2013. – Т. 14, № 7. – С. 379–472.
  7. Хамитова А.Ф., Дождев С.С., Загидуллин Ш.З., Ионин В.А., Гареева Д.Ф., Загидуллин Н.Ш. Значение сывороточных биомаркеров в прогнозировании развития сердечной недостаточности и смертности // Артериальная гипертензия. – 2018. – Т. 24, № 1. – С. 101–107.
  8. Чучалин А.Г., Синопальников А.И., Козлов Р.С., Тюрин И.Е., Рачина С.А. Внебольничная пневмония у взрослых: практические рекомендации по диагностике, лечению и профилактике (Пособие для врачей) // Клин. микробиол. антимикроб. химиотер. – 2010. – Т. 12, № 3. – С. 186–225.
  9. Albaum M.N., Hill L.C., Murphy M., Li Y.H., Fuhrman C.R., Britton C.A., Kapoor W.N., Fine M.J. Interobserver reliability of the chest radiograph in communityacquired pneumonia. PORT Investigators. Chest., 1996, vol. 110, no. 2, pp. 343–350.
  10. Bacci M.R., Leme R.C., Zing N.P., Murad N., Adami F., Hinnig P.F., Feder D., Chagas A.C., Fonseca F.L. IL-6 and TNF-αserum levels are associated with early death in community-acquired pneumonia patients. Braz. J. Med. Biol. Res., 2015, vol. 48, no. 5, pp. 427–432.
  11. Basi S.K., Marrie T.J., Huang J.Q., Majumdar S.R. Patients admitted to hospital with suspected pneumonia and normal chest radiography. epidemiology, microbiology and outcomes. Am. J. Med., 2004, vol. 117, no. 5, pp. 305–311.
  12. Boyd A.R., Orihuela C.J. Dysregulated inflammation as a risk factor for pneumonia in the elderly. Aging Dis., 2011, vol. 2, no. 6, pp. 487–500.
  13. Brown J.S. Biomarkers and community-acquired pneumonia. Thorax., 2009, vol. 64, no. 7, pp. 556–558.
  14. Bruunsgaard H. The clinical impact of systemic lowlevel inflammation in elderly populations. With special reference to cardiovascular disease, dementia and mortality. Dan. Med. Bull., 2006, vol. 53, no. 3, pp. 285–309.
  15. Calbo E., Alsina M., Rodríguez-Carballeira M., Lite J., Garau J. The impact of time on the systemic inflammatory response in pneumococcal pneumonia. Eur. Respir. J., 2010, vol. 35, no. 3, pp. 614–618.
  16. Crisafulli E., Menéndez R., Huerta A., Martinez R., Montull B., Clini E., Torres A. Systemic inflammatory pattern of patients with community-acquired pneumonia with and without COPD. Chest., 2013, vol. 143, no. 4, pp. 1009–1017.
  17. Dai S., Walsh P., Wielgosz A., Gurevich Y., Bancej C., Morrison H. Comorbidities and mortality associated with hospitalized heart failure in Canada. Can. J. Cardiol., 2012, vol. 28, no. 1, pp. 74–79.
  18. de Werra I., Jaccard C., Corradin S.B., Chioléro R., Yersin B., Gallati H., Assicot M., Bohuon C., Baumgartner J.D., Glauser M.P., Heumann D. Cytokines, nitrite/nitrate, soluble tumor necrosis factor receptors, and procalcitonin concentrations: comparisons in patients with septic shock, cardiogenic shock, and bacterial pneumonia. Crit. Care. Med., 1997, vol. 25, no. 4, pp. 607–613.
  19. Derosa G., Maffioli P., Simental-Mendía L.E., Bo S., Sahebkar A. Effect of curcumin on circulating interleukin-6 concentrations: A systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials. Pharmacol. Res., 2016, vol. 111, pp. 394–404.
  20. Dickstein K., Cohen-Solal A., Filippatos G., McMurray J.J., Ponikowski P., Poole-Wilson P.A., Strömberg A., van Veldhuisen D.J., Atar D., Hoes A.W., Keren A., Mebazaa A., Nieminen M., Priori S.G., Swedberg K. ESC guidelines for the diagnosis and treatment of acute and chronic heart failure the Task Force for the diagnosis and treatment of acute and chronic heart failure 2008 of the European Society of Cardiology. Developed in collaboration with the Heart Failure Association of the ESC (HFA) and endorsed by the European Society of Intensive Care Medicine (ESICM). Eur. J. Heart. Fail., 2008, vol. 10, no. 10, pp. 933–989.
  21. El-Solh A.A., Sikka P., Ramadan F., Davies J. Etiology of severe pneumonia in the very elderly. Am. J. Respir.Crit. Care. Med., 2001, vol. 163, no. 3, pp. 645–651.
  22. Fernández-Sabé N., Carratalà J., Rosón B., Dorca J., Verdaguer R., Manresa F., Gudiol F. Communityacquired pneumonia in very elderly patients: causative organisms, clinical characteristics, and outcomes. Medicine (Baltimore)., 2003, vol. 82, no. 3, pp. 159–169.
  23. Fink A.M., Gonzalez R.C., Lisowski T., Pini M., Fantuzzi G., Levy W.C., Piano M.R. Fatigue, inflammation, and projected mortality in heart failure. J. Card. Fail., 2012, vol. 18, no. 9, pp. 711–716.
  24. Fung H.B., Monteagudo-Chu M.O. Community-acquired pneumonia in the elderly. Am. J. Geriatr. Pharmacother., 2010, vol. 8, no. 1, pp. 47–62.
  25. Gau J.T., Acharya U., Khan S., Heh V., Mody L., Kao T.C. Pharmacotherapy and the risk for community-acquired pneumonia. BMC Geriatrics., 2010, vol. 10:45. doi: 10.1186/1471-2318-10-45
  26. Gilbert D.N. Procalcitonin as a biomarker in respiratory tract infection. Clin. Infect. Dis., 2011, vol. 52, pp. 346–350.
  27. González-Castillo J., Martín-Sánchez F.J., Llinares P. Guidelines for the management of communityacquired pneumonia in the elderly patient. Rev. Esp. Quimioter., 2014, vol. 27, no. 1, pp. 69–86.
  28. Goyal A., Norton C.R., Thomas T.N., Davis R.L., Butler J., Ashok V., Zhao L., Vaccarino V., Wilson P.W. Predictors of incident heart failure in a large insured population: a one million person-year follow-up study. Circ. Heart Fail., 2010, vol. 3, no. 6, pp. 698–705.
  29. Gutiérrez F., Masiá M., Rodríguez J.C., Mirete C., Soldán B., Padilla S., Hernández I., De Ory F., Royo G., Hidalgo A.M. Epidemiology of community-acquired pneumonia at the dawn of the 21st century: a prospective study on the Mediterranean coast of Spain. Clin. Microbiol. Infect., 2005, vol. 11, no. 10, 788–800.
  30. Horie M., Ugajin M., Suzuki M., Noguchi S., Tanaka W., Yoshihara H., Kawakami M., Kichikawa Y., Sakamoto Y. Diagnostic and prognostic value of procalcitonin in community-acquired pneumonia. Am. J. Med. Sci., 2012, vol. 343, no. 1, pp. 30–35.
  31. Ishiguro T., Takayanagi N., Yamaguchi S., Yamakawa H., Nakamoto K., Takaku Y., Miyahara Y., Kagiyama N., Kurashima K., Yanagisawa T., Sugita Y. Etiology and factors contributing to the severity and mortality of community-acquired pneumonia. Intern. Med., 2013, vol. 52, no. 3, pp. 317–324.
  32. Janssens J.P., Krause K.H. Pneumonia in the very old. Lancet. Infect. Dis., 2004, vol. 4, no. 2, pp. 112–124.
  33. Joffe E., Justo D., Mashav N., Swartzon M., Gur H., Berliner S., Paran Y. C-reactive protein to distinguish pneumonia from acute decompensated heart failure. Clin. Biochem., 2009, vol. 42, no. 16–17, pp. 1628–1634.
  34. José V., Domingo M.L., Soto C., Cogollos J. Radiology of bacterial pneumonia. Eur. J. Radiol., 2004, vol. 51, no. 2, pp. 102–113.
  35. Kafkas N., Venetsanou K., Patsilinakos S., Voudris V., Antonatos D., Kelesidis K., Baltopoulos G., Maniatis P., Cokkinos D.V. Procalcitonin in acute myocardial infarction. Acute. Card. Care., 2008, vol. 10, no. 1, pp. 30–36.
  36. Kanwar M., Brar N., Khatib R., Fakih M.G. Misdiagnosis of community-acquired pneumonia and inappropriate utilization of antibiotics: side effects of the 4‑h antibiotic administration rule. Chest., 2007, vol. 131, no. 6, pp. 1865–1869.
  37. Kaplan V., Angus D.C. Community-acquired pneumonia in the elderly. Crit. Care. Clin., 2003, vol. 19, no. 4, pp. 729–748.
  38. Kaplan V., Angus D.C., Griffin M.F., Clermont G., Scott Watson R., Linde-Zwirble W.T. Hospitalized community-acquired pneumonia in the elderly: Age- and sexrelated patterns of care and outcome in the United States. Am. J. Respir. Crit. Care. Med., 2002, vol. 165, no. 6, pp. 766–772.
  39. Kelly E., MacRedmond R.E., Cullen G., Greene C.M., McElvaney N.G., O’Neill S.J. Community-acquired pneumonia in older patients: does age influence systemic cytokine levels in community-acquired pneumonia? Respirology, 2009, vol. 14, no. 2, pp. 210–216.
  40. Kim J.H., Seo J.W., Mok J.H., Kim M.H., Cho W.H., Lee K., Kim K.U., Jeon D., Park H.K., Kim Y.S., Kim H.H., Lee M.K. Usefulness of plasma procalcitonin to predict severity in elderly patients with community-acquired pneumonia. Tuberc. Respir. Dis. (Seoul), 2013, vol. 74, no. 5, pp. 207–214.
  41. Kinugawa T., Kato M., Yamamoto K., Hisatome I., Nohara R. Proinflammatory cytokine activation is linked to apoptotic mediator, soluble Fas level in patients with chronic heart failure. Int. Heart. J., 2012, vol. 53, no. 3, pp. 182–186.
  42. Köktürk N., Kanbay A., Bukan N., Ekim N. The value of serum procalcitonin in differential diagnosis of pulmonary embolism and community-acquired pneumonia. Clin. Appl. Thromb. Hemost., 2011, vol. 18, no. 5, pp. 519–525.
  43. Krüger S., Welte T. Biomarkers in community-acquired pneumonia. Expert. Rev. Respir. Med., 2012, vol. 6, no. 2, pp. 203–214.
  44. Lecour S., James R.W. When are pro-inflammatory cytokines SAFE in heart failure? Eur. Heart. J., 2011, vol. 32, no. 6, pp. 680–685.
  45. Lee Y.J., Lee J., Park Y.S., Lee S.M., Yim J.J., Yoo C.G., Kim Y.W., Han S.K., Lee C.H. Predictors of cardiogenic and non-cardiogenic causes in cases with bilateral chest infiltrates. Tuberc. Respir. Dis. (Seoul)., 2013, vol. 74, no. 1, pp. 15–22.
  46. Loeb M.B., Carusone S.B., Marrie T.J., Brazil K., Krueger P., Lohfeld L., Simor A.E., Walter S.D. Interobserver reliability of radiologists’ interpretations of mobile chest radiographs for nursing home-acquired pneumonia. J. Am. Med. Dir. Assoc., 2006, vol. 7, no. 7, pp. 416–419.
  47. Maisel A., Neath S.X., Landsberg J., Mueller C., Nowak R.M., Peacock W.F., Ponikowski P., Möckel M., Hogan C., Wu A.H., Richards M., Clopton P., Filippatos G.S., Di Somma S., Anand I., Ng L.L., Daniels L.B., Christenson R.H., Potocki M., McCord J., Terracciano G., Hartmann O., Bergmann A., Morgenthaler N.G., Anker S.D. Use of procalcitonin for the diagnosis of pneumonia in patients presenting with a chief complaint of dyspnoea: results from the BACH (Biomarkers in Acute Heart Failure) trial. Eur. J. Heart. Fail., 2012, vol. 14, no. 3, pp. 278–286.
  48. Mannel D.N., Echtenacher B. TNF in the inflammatory response. Chem. Immunol., 2000, vol. 74, pp. 141–161.
  49. Maruyama T., Gabazza E.C., Morser J., Takagi T., D’Alessandro-Gabazza C., Hirohata S., Nakayama S., Ramirez A.Y., Fujiwara A., Naito M., Nishikubo K., Yuda H., Yoshida M., Takei Y., Taguchi O. Communityacquired pneumonia and nursing home-acquired pneumonia in the very elderly patients. Respir. Med., 2010, vol. 104, no. 4, pp. 584–592.
  50. Moon J., Kang S.M., Cho I.J., Oh J., Shim J., Lee S.H., Jang Y., Chung N. Clinical and echocardiographic findings of newly diagnosed acute decompensated heart failure in elderly patients. Yonsei. Med. J., 2011, vol. 52, no. 1, pp. 33–38.
  51. Mueller C., Scholer A., Laule-Kilian K., Martina B., Schindler C., Buser P., Pfisterer M., Perruchoud A.P. Use of B-type natriuretic peptide in the evaluation and management of acute dyspnea. N. Engl. J. Med., 2004, vol. 350, no. 7, pp. 647–654.
  52. Mueller T., Leitner I., Egger M., Haltmayer M., Dieplinger B. Association of the biomarkers soluble ST2, galectin-3 and growth-differentiation factor-15 with heart failure and other non-cardiac diseases. Clin. Chim. Acta., 2015, vol. 445, pp. 155–160.
  53. Pei Z.Y., Zhao Y.S., Li J.Y., Xue Q., Gao L., Wang S.W. Fifteen-year evolving trends of etiology and prognosis in hospitalized patients with heart failure. Zhonghua. Xin. Xue. Guan. Bing. Za. Zhi., 2011, vol. 39, no. 5, pp. 434–439.
  54. Peschel T., Schönauer M., Thiele H., Anker S.D., Schuler G., Niebauer J. Invasive assessment of bacterial endotoxin and inflammatory cytokines in patients with acute heart failure. Eur. J. Heart Fail., 2003, vol. 5, 5, pp. 609–614.
  55. Quah J., Jiang B., Tan P.C., Siau C., Tan T.Y. Impact of microbial aetiology on mortality in severe communityacquired pneumonia. BMC. Infect. Dis., 2018, vol. 18, no. 1: 451. doi: 10.1186/s12879-018-3366-4
  56. Reinhart K., Karzai W., Meisner M. Procalcitonin as a marker of the systemic inflammatory response to infection. Intensive Care. Med., 2000, vol. 26, no. 9, pp. 1193–1200.
  57. Restrepo M.I., Reyes L.F. Pneumonia as a cardiovascular disease. Respirology., 2018, vol. 23, no. 3, 250–259.
  58. Saito A., Kohno S., Matsushima T., Watanabe A., Oizumi K., Yamaguchi K., Oda H. Prospective multicenter study of the causative organisms of communityacquired pneumonia in adults in Japan. J. Infect. Chemother., 2006, vol. 12, no. 2, pp. 63–69.
  59. Stanciu A.E., Vatasescu R.G., Stanciu M.M., Iorgulescu C., Vasile A.I., Dorobantu M. Cardiac resynchronization therapy in patients with chronic heart failure is associated with anti-inflammatory and anti-remodeling effects. Clin. Biochem., 2013, vol. 46, no. 3, pp. 230–234.
  60. Tanaka N., Matsumoto T., Kuramitsu T., Nakaki H., Ito K., Uchisako H., Miura G., Matsunaga N., Yamakawa K. High resolution CT findings in communityacquired pneumonia. J. Comput. Assist. Tomogr., 1996, vol. 20, no. 4, pp. 600–608.
  61. Viasus D., Garcia-Vidal C., Manresa F., Dorca J., Gudiol F., Carratalà J. Risk stratification and prognosis of acute cardiac events in hospitalized adults with community-acquired pneumonia. J. Infect., 2013, vol. 66, no. 1, pp. 27–33.
  62. Vila-Corcoles A., Ochoa-Gondar O., Rodriguez-Blanco T., Raga-Luria X., Gomez-Bertomeu F. Epidemiology of community-acquired pneumonia in older adults: A population-based study. Respir. Med., 2009, vol. 103, no. 2, pp. 309–316.
  63. Von Baum H., Welte T., Marre R., Suttorp N., Ewig S. Community-acquired pneumonia through Enterobacteriaceae and Pseudomonas aeruginosa: Diagnosis, incidence and predictors. Eur. Respir. J., 2010, vol. 35, no. 3, pp. 598–605.
  64. Wang W., Zhang X., Ge N., Liu J., Yuan H., Zhang P., Liu W., Wen D. Procalcitonin testing for diagnosis and short-term prognosis in bacterial infection complicated by congestive heart failure: a multicenter analysis of 4,698 cases. Crit. Care., 2014, vol. 18, no. 1: R4. doi: 10.1186/cc13181
  65. Wang Y., Zhou Y., Meng L., Lu X., Ou N., Li X. Inflammatory mediators in Chinese patients with congestive heart failure. J. Clin. Pharmacol., 2009, vol. 49, no. 5, pp. 591–599.
  66. Woods G.L., Isaacs R.D., McCarroll K.A., Friedland I.R. Ertapenem therapy for community-acquired pneumonia in the elderly. J. Am. Geriatr. Soc., 2003, vol. 51, no. 11, pp. 1526–1532.
  67. Xiao K., Su L.X., Han B.C., Yan P., Yuan N., Deng J., Li J., Xie L.X. Analysis of the severity and prognosis assessment of aged patients with communityacquired pneumonia: a retrospective study. J. Thorac. Dis., 2013, vol. 5, no. 5, pp. 626–633.
  68. Yoon J.Y., Yang D.H., Cho H.J., Kim N.K., Kim C.Y., Son J., Roh J.H., Jang S.Y., Bae M.H., Lee J.H., Park H.S., Cho Y., Chae S.C. Serum levels of carbohydrate antigen 125 in combination with N-terminal pro-brain natriuretic peptide in patients with acute decompensated heart failure. Korean. J. Intern. Med.,2019, vol. 34, no. 4, pp. 811–818.
  69. Zalacain R., Torres A., Celis R., Blanquer J., Aspa J., Esteban L., Menéndez R., Blanquer R., Borderías L. Community-acquired pneumonia in the elderly: Spanish multicentre study. Eur. Respir. J., 2003, vol. 21, 2, pp. 294–302.
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА:

внебольничная пневмония, хроническая сердечная недостаточность, диагностика, мультиспиральная компьютерная томография органов грудной клетки, С-реактивный белок.

ДЛЯ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ:

ФГОУ ВО ≪Смоленский государственный медицинский университет≫ Минздрава России

214019, г. Смоленск, ул. Крупской, д. 28

Межрегиональная ассоциация по клинической микробиологии и антимикробной химиотерапии

214019, г. Смоленск, ул. Кирова, д. 46‑а

Бобылев Андрей Анатольевич – к.м.н., научный сотрудник научно-исследовательского центра,

координатор проекта МАКМАХ

Тел.: +7 (4812) 45-06-02

Е-mail: andbobylev@yandex.ru

Козлов Роман Сергеевич – д.м.н., профессор, член-корреспондент РАН, президент МАКМАХ

Тел. +7 (4812) 55-02-75

Е-mail: roman.kozlov@antibiotic.ru

ФГАОУ ВО ≪Российский университет дружбы народов≫ Министерства образования России

117198, г. Москва, ул. Миклухо-Маклая, д. 6

Рачина Светлана Александровна – д.м.н., профессор кафедры внутренних болезней с курсом кардиологии и функциональной диагностики имени академика В.С. Моисеева

Тел.: +7 (495) 434-53-00

Е-mail: svetlana.ratchina@antibiotic.ru

ФГАОУ ВО ≪Первый Московский государственный медицинский университет имени И.М. Сеченова≫ Минздрава России

119992, г. Москва, ул. Доватора, д. 15, стр. 2

ФГБУ ≪НИИ пульмонологии≫ ФМБА России

105077, г. Москва, Ореховый б-р, д. 28

Авдеев Сергей Николаевич – д.м.н., профессор, член-корреспондент РАН, зав. кафедрой пульмонологии

ФГАОУ ВО ≪Первый МГМУ им. И.М. Сеченова≫ Минздрава России, руководитель клинического отдела ФГБУ ≪НИИ пульмонологии≫ ФМБА России

Тел.: +7 (495) 708-35-76

Е-mail: serg_avdeev@list.ru

ГЕПАТОТОКСИЧЕСКИЕ РЕАКЦИИ У БОЛЬНЫХ ТУБЕРКУЛЕЗОМ НА ОСНОВНЫЕ ПРОТИВОТУБЕРКУЛЕЗНЫЕ ХИМИОПРЕПАРАТЫ. СОСТОЯНИЕ ПРОБЛЕМЫ

Статья 3.Страница 22.
НАЗВАНИЕ СТАТЬИ:

ГЕПАТОТОКСИЧЕСКИЕ РЕАКЦИИ У БОЛЬНЫХ ТУБЕРКУЛЕЗОМ НА ОСНОВНЫЕ ПРОТИВОТУБЕРКУЛЕЗНЫЕ ХИМИОПРЕПАРАТЫ. СОСТОЯНИЕ ПРОБЛЕМЫ

DOI: 10.7868/S258766782002003X

АВТОРЫ:

Авербах М.М.

ФГБНУ «Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза», г. Москва, Россия

ОПИСАНИЕ:

В обзоре представлены имеющиеся к настоящему моменту научные данные, отражающие представления о морфологии, лабораторной диагностике, некоторых генетических дефектах метаболизма и иммунопатологических реакциях при возникновении гепатотоксических реакций на лечение изониазидом, рифампицином и пиразинамидом. Возникновение реакции на изониазид чаще связано с генетически обусловленными дефектами N-ацетилтрансферазы 2 (NAT2) и аллелью цитохрома P450 CYP2 E1 c1/c1, а на рифампицин в цитохроме Р450 (CYP3 A4). Для пиразинамида достоверных данных о возможных генетических дефектах пока нет. Приводятся данные об изучении различных лабораторных показателей ферментов в качестве возможных новых маркеров гепатотоксических реакций. Анализируются исследования об иммунологической диагностике с помощью реакции бласттрансформации и определения цитокинов для подтверждения наличия гепатотоксической реакции на изониазид, рифампицин, пиразинамид и этамбутол.

Работа выполнена в рамках НИР № 0515-2019-0016 «Персонализированные подходы к лечению туберкулеза органов дыхания у детей и подростков».

Поступила 10.01.2020 г.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ:
  1. Дубровская Н.А. Клинико-иммунологические проявления побочного действия рифампицина при лечении больных туберкулезом // Дисс. канд. мед. наук. – М. – 1984.
  2. Никитин И.Г., Сторожаков Г.И., Буеверов А.О. Лекарственные поражения печени / В кн.: Болезни печени и желчевыводящих путей. Под ред. В.Т. Ивашкина. М-Вести. – М. – 2005. – C. 217–223.
  3. Панова Л.В. Гепатотоксические реакции на химиотерапию и их коррекция у подростков больных туберкулезом. Автореф. дисс. докт. М. – 2001.
  4. Abbara A., Chitty S., Roe J.K., Ghani R., Collin S.M., Ritchie A., Kon O.M., Dzvova J., Davidson H., Edwards T.E., Hateley C., Routledge M., Buckley J., Davidson R.N., John L. Drug-induced liver injury from antituberculous treatment: a retrospective study from a large TB centre in the UK. BMC Infectious Diseases, 2017, vol. 17, p. 231, doi: 10.1186/s12879-017-2330‑z
  5. Aithal G.P., Watkins P.B., Andrade R.J., Larrey D., Molokhia M., Takikawa H., Hunt C.M., Wilke R.A., Avigan M., Kaplowitz N., Bjornsson E., Daly A.K. Case definition and phenotype standardization in druginduced liver injury. Clin. Pharmacol. Ther., 2011, vol. 89, pp. 806–815, doi.org/10.1038/clpt.2011.58
  6. Attri S., Rana S.V., Vaiphei K., Sodhi C.P., Katyal R., Goel R.C., Nain CK, Singh K. Isoniazid- and rifampicininduced oxidative hepatic injury –protection byN-acetylcysteine. Hum. Exp. Toxicol., 2000, vol. 19, pp. 517–522, doi:10.1191/096032700674230830
  7. Cao J., Yijun Mi.Y., Shi C., Bian Y., Huang C., Ye Z., Liu L., Miao L. First-line anti-tuberculosis drugs induce hepatotoxicity: A novel mechanism based on a urinary metabolomics platform. Biochemical and Biophysical Research Communication, doi: 10.1016/j.bbrc.2018.02.030
  8. Chowdhury A., Santra A., Kundu S., Mukherjee A., Pandit A., Chaudhuri S., Dhali G.K. Induction of oxidative stress in antitubercular drug-induced hepatotoxicity. Indian J. Gastroenterol., 2001, vol. 20, 97–100. PMID:11400818.
  9. Coombs P.R., Gell P.G. Classification of allergic reactions responsible for clinical hypersensitivity and disease. In: Clinical aspects of immunology. Ed. By R.R Gell. Oxford, Oxford University Press, 1968, 575–596.
  10. Ji G.J., Wang Y., Wu S.Q., Liu Q.Q., Wu J.C., Zhang M.M., Sandford A.J., He J.Q. Association between TXNRD1 polymorphisms and anti-tuberculosis drug-induced hepatotoxicity in a prospective study. Genet. Mol. Res., 2016, vol. 2, p. 15, doi: 10.4238/gmr.15038296
  11. Kolars J.C., Schmiedlin-Ren P., Schuetz J.D., Fang C., Watkins P.B. Identification of rifampin-inducible P450 IIIA4 (CYP3 A4) in human small bowel enterocytes. J. Clin. Invest., 1992, vol. 90, pp. 1871–1878, doi: 10.1172/JCI116064
  12. Leise M.D., Poterucha J.J., Talwalkar J.A. Drug-Induced Liver Injury. Mayo. Clin. Proc., 2014, vol. 89, 95–106, doi: org/10.1016/j.mayocp.2013.09.016
  13. Li C., Long J., Hu X., Zhou Y. GSTM1 and GSTT1 genetic polymorphisms and risk of anti-tuberculosis drug-induced hepatotoxicity: an updated meta-analysis. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis., 2013, vol. 32, pp. 859–868, doi: 10.1007/s10096-013-1831‑y
  14. Licata A. Adverse drug reactions and organ damage: The liver. Eur. J. Intern. Med., 2016, doi: org/10.1016/j.ejim.2015.12.017
  15. Lochmatter P., Zawodniak A., Pichler W.J. In vitro tests in drug hypersensitivity diagnosis. Immunol. Allergy Clin. N. Am., 2009, vol. 29, pp. 537–554. doi: 10.1016/j.iac.2009.04.009
  16. Maria V.A.J., Victorino R.M.M. Diagnostic value of specific T cell reactivity to drugs in 95 cases of drug induced liver injury. Gut., 1997, vol. 41, pp. 534–540, doi: 10.1136/gut.41.4.534
  17. Metushi I.G., Cai P., Zhu X., Nakagawa T., Uetrecht J.P. A fresh look at the mechanism of isoniazid-induced hepatotoxicity. Clin. Pharmacol. Ther., 2011, vol. 89, pp. 911–914, doi: 10.1038/clpt.2010.355
  18. Metushi I.G., Zhu X., Chen X., Gardam M.A. and Uetrecht J. Mild isoniazid-induced liver injury in humans is associated with an increase in Th17 cells and T cells producing IL-10. Chem. Res. Toxicol. 2014, vol. 27, pp. 683–689, doi: 10.1021/tx500013z
  19. Mikus M., Drobin K., Gry M., Bachmann J., Lindberg J., Yimer G., Aklillu E., Makonnen E., Aderaye G., Roach J., Fier I., Kampf C., Gеopfert J., Perazzo H., Poynard T., Stephens C., Andrade R.J., Lucena M.I., Arber N., Uhlen M., Watkins P.B., Schwenk J.M., Nilsson P., Schuppe-Koistinen I. Elevated levels of circulating CDH5 and FABP1 in association with human drug-induced liver injury. Liver International, 2016, doi: 10.1111/liv.13174
  20. Nishimura Y., Kurata N., Sakurai E., Yasuhara H. Inhibitory effect of antituberculosis drugs on human cytochrome P450‑mediated activities. J. Pharmacol. Sci., 2004, vol. 96, pp. 293–300, doi: 10.1254/jphs.fp0040296
  21. Ogese M.O., Faulkner L., Jenkins R.E., French N.S., Copple I.M., Antoine D.J., Elmasry M., Malik H., Goldring C.E., Park B.K., Betts C.J., Naisbitt D.J. Characterization of drug-specific signalling between primary human hepatocytes and immune cells. Toxicological Sciences, 2017, pp. 1–14, doi: 10.1093/toxsci/kfx06
  22. Pichler W.J., Tilch J. The lymphocyte transformation test in the diagnosis of drug hypersensitivity. Allergy, 2004, vol. 59, pp. 809–820, doi: 10.1111/j.1398-9995. 2004.00547.x
  23. Sarma G.R., Immanuel C., Kailasam S., Narayana A.S., Venkatesan P. Rifampin-induced release of hydrazine from isoniazid. A possible cause of hepatitis during treatment of tuberculosis with regimens containing isoniazid and rifampin. Am. Rev. Respir. Dis., 1986, vol. 133, pp. 1072–1075, doi: 10.1164/arrd.1986.133.6.1072
  24. Schomaker S., Warner R., Bock J., Johnson K., Potter D., Van Winkle L., Aubrecht J. Assessment of emerging biomarkers of liver injury in human subjects. Toxicological sciences, 2013, vol. 132, pp. 276–283, doi: 10.1093/toxsci/kft009
  25. Sodhi C.P., Rana S.V., Mehta S.K., Vaiphei K., Attari S., Mehta S. Study of oxidative-stress in isoniazidrifampicin induced hepatic injury in young rats. Drug Chem. Toxicol., 1997, vol. 20, pp. 255–269, doi: 10.3109/01480549709003881
  26. Sun Q., Sha W., Gui X-W., Xiao Y-J., Zeng W-H., Sun W-W., Xiao H-P., Ye W-Y. Drug-induced lymphocyte stimulation test in the prediction of drug induced hypersensitivity to antituberculosis drugs. Diagn. Microbiol. Infect. Dis., 2015, doi: 10.1016/j. diagmicrobio.2015.03.008
  27. Suzuki Y., Miwa S., Shirai M., Ohba H., Murakami M., Fujita K. Suda T., Nakamura H., Hayakawa H., Chida K. Drug lymphocyte stimulation test in the diagnosis of adverse reactions to antituberculosis drugs. Chest, 2008, vol. 134, pp. 1027–1032, doi: 10.1378/chest.07-3088
  28. Te Brake L.H.M., de Knegt G.J., de Steenwinkel J.E., van Dam T.J.P., Burger D.M., Russel F.G.M., van Crevel R., Koenderink J.B., Aarnoutse R.E. The role of efflux pumps in tuberculosis treatment and their promise as a target in drug development: Unraveling the black box. Annu. Rev. Pharmacol. Toxicol., 2018, vol. 6, рр. 271–291, doi: 10.1146/annurev-pharmtox-010617-052438
  29. Tostmann A., Boeree M.J., Aarnoutse R.E., de Lange W.C.M., van der Ven A.J.A.M., Dekhuijzen R. Antituberculosis drug-induced hepatotoxicity: Concise up-to-date review. Journal of Gastroenterology and Hepatology, 2008, vol. 23, pp. 192–202, doi: 10.1111/j.1440-1746.2007.05207x
  30. Umeki S. Adverse effects of antitubercular drugs and significance of measurement of the drug-stimulating lymphocyte transformation rate. Jpn. J. Med., 1989, vol. 28, no. 3, pp. 335–340, doi: 10.2169/internalmedicine1962.28.335
  31. Usui T., Whitaker P., Meng X., Watson J., Antoine D.J., French N.S., Park B,K., Naisbitt D.J. Detection of drug-responsive T‑lymphocytes in a case of fatal antituberculosis drug-related liver injury. Chem. Res. Toxicol., 2016, vol. 29, pp. 1793–1795, doi: 10.1021/acs.chemrestox.6 b00393
  32. Usui T., Meng X., Saide K., Farrell J., Thomson P., Whitaker P., Watson J., French N.S., Park B.K., Naisbitt D.J. From the Cover: Characterization of isoniazid-specific T-cell clones in patients with anti-tuberculosis drug-related liver and skin injury. Toxicol. Sci.,2017, vol. 155, pp. 420–431, doi: 10.1093/toxsci/kfw218
  33. Walubo A., Smith P., Folb P.I. The role of oxygen free radicals in isoniazid-induced hepatotoxicity. Methods Find. Exp. Clin. Pharmacol., 1998, vol. 20, pp. 649–655, doi: 10.1358/mf.1998.20.8.487491
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА:

противотуберкулезные препараты, гепатотоксические реакции.

ДЛЯ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ:

ФГБНУ «Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза»

107564, г. Москва, Яузская аллея, д. 2

Авербах Михаил Михайлович – доктор медицинских наук, профессор, главный научный сотрудник

отдела иммунологии

Тел.: +7 (499) 785-90-72

Е-mail: amm50@mail.ru

ПОЛУЧЕНИЕ Mycobacterium tuberculosis ПОСЛЕ ФАГОЦИТОЗА НЕЙТРОФИЛАМИ IN VIVO ДЛЯ ГЕНЕТИЧЕСКОГО И ФУНКЦИОНАЛЬНОГО АНАЛИЗА

Статья 4.Страница 30.
НАЗВАНИЕ СТАТЬИ:

ПОЛУЧЕНИЕ Mycobacterium tuberculosis ПОСЛЕ ФАГОЦИТОЗА НЕЙТРОФИЛАМИ IN VIVO ДЛЯ ГЕНЕТИЧЕСКОГО И ФУНКЦИОНАЛЬНОГО АНАЛИЗА

DOI: 10.7868/S2587667820020041

АВТОРЫ:

Майоров К.Б.1, Григоров А.С.2, Кондратьева Е.В.1, Ажикина Т.Л.2, Апт А.С.1

1 ФГБНУ «Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза», г. Москва, Россия

2 ФГБУН «Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН», г. Москва, Россия

ОПИСАНИЕ:

Нами разработан новый метод выделения ex vivo нейтрофилов с высоким содержанием фагоцитированных Mycobacterium tuberculosis. Метод, основанный на фракционировании перитонеального экссудата в ступенчатом градиенте плотности перколла, позволяет получать чистую популяцию микобактерий, которые подверглись фагоцитозу в течение 2 часов взаимодействия с нейтрофилами in vivo. Получены первые данные об изменении геномного профиля транскрипции таких бактерий методами RNA-seq по сравнению с культивируемыми в среде Дюбо. Результаты указывают на исключительно быстрый переход в состояние приспособления к стрессовым условиям внутри фагоцитов хозяина за счет повышения экспрессии генов, регулирующих реакции клеточного дыхания, и снижения экспрессии генов для факторов вирулентности.

Работа выполнена при финансовой поддержке РФФИ (грант 19-04-00058).

Поступила 29.01.2020 г.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ:
  1. Azhikina1. T.L. Skvortsov T., Radaeva T., Mardanov A., Ravin N., Apt A., Sverdlov E. A new technique for obtaining whole pathogen transcriptomes from infected host tissues. Biotechniques, 2010, vol. 48, no. 2, pp. 139–144.
  2. Chin A.C., Parkos C.A. Neutrophil trans-epithelial migration and epithelial barrier function in IBD: potential targets for inhibiting neutrophil trafficking. Ann. N.Y. Acad. Sci., 2006, vol. 1072, pp. 276–287.
  3. Dallenga T., Repnik U., Corleis B., Eich J., Reimer R., Griffiths G.W., Schaible U.E.M. Tuberculosis-induced necrosis of infected neutrophils promotes bacterial growth following phagocytosis by macrophages. Cell Host & Microbe, 2017, vol. 22, no. 4, pp. 519–530.
  4. Eruslanov E.B., Lyadova I.V., Kondratieva T.K., Majorov K.B., Scheglov I.V., Orlova M.O., Apt A.S. Neutrophil responses to Mycobacterium tuberculosis infection in genetically susceptible and resistant mice. Infect. Immun., 2005, vol. 73, no. 3, pp. 1744–1753.
  5. Eum S.Y., Kong J.H., Hong M.S., Lee Y.J., Kim J.H., Hwang S.H., Cho S.N., Via L.E., Barry C.E. 3rd. Neutrophils are the predominant infected phagocytic cells in the airways of patients with active pulmonary
  6. Chest, 2010, vol. 137, no. 1, pp. 122–128.
  7. Jaeger B.N., Donadieu J., Cognet C. Bernat C., Ordoñez-Rueda D., Barlogis V., Mahlaoui N., Fenis A., Narni-Mancinelli E., Beaupain B., Bellanné-Chantelot C., Bajénoff M., Malissen B., Malissen M., Vivier E., Ugolini S. Neutrophil depletion impairs natural killer cell maturation, function and homeostasis. J. Exp. Med., 2012, vol. 209, no. 3, pp. 565–580.
  8. Ignatov D.V., Salina E.G., Fursov M.V., Skvortsov T.A., Azhikina T.L., Kaprelyants A.S. Dormant non-culturable Mycobacterium tuberculosis retains stable low-abundant mRNA. BMC Genomics, 2015, vol. 16, 954.
  9. Kondratieva T.K., Rubakova E.I., Linge I.A., Evstifeev V.V., Majorov K.B., Apt A.S. B cells delay neutrophil migration toward the site of stimulus: tardiness critical for effective bacillus Calmette-Guérin vaccination against tuberculosis infection in mice. J. Immunol., 2010, vol. 184, no. 3, pp. 1227–1234.
  10. Kozakiewicz L., Chen Y., Xu J., Wang Y., Dunussi-Joannopoulos K., Ou Q., Flynn J.L., Porcelli S.A., Jacobs W.R. Jr, Chan J. B cells regulate neutrophilia during Mycobacterium tuberculosis infection and BCG vaccination by modulating the intereleukine-17 response. PLoS Pathog., 2013, vol. 9, p. e1003472.
  11. Kuijpers T.W., van den Berg T.K., Roos D. Neutrophils forever…, Phagocyte-pathogen interactions. Ed: Russel D.G., Gordon S., ASM Press, Washington DC, 2009, pp. 3–26.
  12. Langmead B., Salzberg, S.L. Fast gapped-read alignment with Bowtie 2. Nat. Methods, 2012, vol. 9, 4, pp. 357–359.
  13. Lew J.M., Kapopoulou A., Jones L.M., Cole S.T. TubercuList – 10 years after. Tuberculosis (Edinb), 2011, vol. 91, no. 1, pp. 1–7.
  14. Nandi B., Behar S.M. Regulation of neutrophils by interferon-γlimits lung inflammation during tuberculosis infection. J. Exp. Med., 2012, vol. 208, no. 11, pp. 2251–2262.
  15. Nathan C. Neutrophils and immunity: challenges and opportunities. Nat. Rev. Immunol., 2006, vol. 6, no. 3, pp. 173–182.
  16. Quint J.K., Wedzicha J.A. The neutrophil in chronic obstructive pulmonary disease. J. Allergy Clin. Immunol., 2007, vol. 119, no. 5, pp. 1065–1071.
  17. Robinson M.D., McCarthy D.J., Smyth G.K. edgeR: a Bioconductor package for differential expression analysis of digital gene expression data. Bioinformatics, 2010, vol. 26, no. 1, pp. 139–140.
  18. Rohde K.H. Veiga D.F., Caldwell S., Balázsi G., Russell D.G. Linking the transcriptional profiles and the physiological states of Mycobacterium tuberculosis during an extended intracellular infection. PLoS Pathog., 2012, vol. 8, no. 6, p. e1002769.
  19. Tan S., Russell D. GTrans-species communication in the Mycobacterium tuberculosis-infected macrophage. Immunol. Rev., 2015, vol. 264, no. 1, pp. 233–248.
  20. Tanaka D., Kagari T., Doi H., Shimozato T. Essential role of neutrophils in anti-type II collagen antibody and lipopolysaccharide-induced arthritis. Immunology, 2006, vol. 119, no. 2, pp. 195–202.
  21. Wattam A.R., Abraham D., Dalay O., Disz T.L., Driscoll T., Gabbard J.L., Gough R., Hix D., Kenyon R., Machi D., Mao C., Nordberg E.K., Olson R., Overbeek R., Pusch G.D., Shukla M., Schulman J., Stevens R.L., Sullivan D.E., Vonstein V., Warren A., Will R., Wilson M.J., Yoo H.S., Zhang C., Zhang Y., Sobral B.W. PATRIC, the bacterial bioinformatics database and analysis resource. Nucleic Acids Res., 2014, vol. 42 (Database issue), pp. D581–591.
  22. Wells R.M., Jones C.M., Xi Z., Speer A., Danilchanka O., Doornbos K.S., Sun P., Wu F., Tian C., Niederweis M. Discovery of a siderophore export system essential for virulence of Mycobacterium tuberculosis. PLoS Pathog., 2013, vol. 9, no. 1, p. e1003120.
  23. Witko-Sarsat V., Rieu P., Descamps-Latscha B., Lesavre P., Halbwachs-Mecarelli L. Neutrophils: molecules, functions and pathophysiological aspects. Lab. Invest., 2000, vol. 80, no. 5, pp. 617–653.
  24. Yeremeev V., Linge I., Kondratieva T., Apt A. Neutrophils exacerbate tuberculosis infection in genetically susceptible mice. Tuberculosis (Edinb)., 2015, vol. 95, no. 4, pp. 447–451.
  25. Young M.D., Wakefield M.J., Smyth G.K., Oshlack A. Gene ontology analysis for RNA-seq: accounting for selection bias. Genome Biol. 2010, vol. 11, p. R14.
  26. Yu E.A., John S.H., Tablante E.C., King C.A., Kenneth J., Russell D.G., Mehta S. Host transcriptional responses following ex vivo re-challenge with Mycobacterium tuberculosis vary with disease status. PLoS One, 2017, vol. 12, no. 10, p. e0185640.
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА:

микобактерии, нейтрофилы, фагоцитоз, экспрессия генов, метаболизм, вирулентность.

ДЛЯ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ:

ФГБНУ ≪Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза≫

107564, г. Москва, Яузская аллея, д. 2

Майоров Константин Борисович – канд. биол. наук, с.н.с. лаборатории иммуногенетики отдела иммунологии

Тел.: +7 (499) 785-90-72

E-mail: majorov@list.ru

Кондратьева Елена Валерьевна – канд. биол. наук, с.н.с. лаборатории иммуногенетики отдела иммунологии

Тел.: +7 (499) 785-90-72

E-mail: alyonakondratyeva74@gmail.com

Апт Александр Соломонович – докт. биол. наук, профессор, зав. лабораторией иммуногенетики

отдела иммунологии

Тел.: +7 (499) 785-90-72

E-mail: alexapt0151@gmail.com

ФГБУН ≪Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова≫ РАН

117437, г. Москва, ул. Миклухо-Маклая д. 16/10

Григоров Артем Сергеевич – аспирант лаборатории регуляторной транскриптомики

Тел.: +7 (495) 330-69-92

E-mail: artgrigorov@gmail.com

Ажикина Татьяна Леодоровна – докт. биол. наук, зав. лабораторией регуляторной транскриптомики

Тел.: +7 (495) 330-69-92

E-mail: tatazhik@ibch.ru

ОСОБЕННОСТИ ОБОСТРЕНИЙ У ПАЦИЕНТОВ С РАЗЛИЧНЫМИ ФЕНОТИПАМИ ХРОНИЧЕСКОЙ ОБСТРУКТИВНОЙ БОЛЕЗНИ ЛЕГКИХ

Статья 5.Страница 36.
НАЗВАНИЕ СТАТЬИ:

ОСОБЕННОСТИ ОБОСТРЕНИЙ У ПАЦИЕНТОВ С РАЗЛИЧНЫМИ ФЕНОТИПАМИ ХРОНИЧЕСКОЙ ОБСТРУКТИВНОЙ БОЛЕЗНИ ЛЕГКИХ

DOI: 10.7868/S2587667820020053

АВТОРЫ:

Кудрявцева Э.З.1, Макарьянц Н.Н.2, Никитина Л.Ю.3

1 ГАУЗ «Городская клиническая больница № 16», г. Казань, Россия

2 ФГБНУ «Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза», г. Москва, Россия

3 АО Группа компаний «Медси», Клинико-диагностический центр «Медси на Белорусской», г. Москва, Россия

ОПИСАНИЕ:

В статье изложены особенности стабильного течения и обострений хронической обструктивной болезни легких (ХОБЛ) у 140 пациентов с различными фенотипами заболевания. Проведен анализ влияния таких ключевых факторов лечебно-диагностического процесса, как наличие коморбидных заболеваний, выбор препаратов базисной терапии, правильность техники ингаляций, полипрагмазия. Индивидуализированный подбор наиболее адекватной для каждого пациента терапии имеет важное значение и позволяет улучшить прогноз и качество жизни больных ХОБЛ.

Поступила 28.02.2020 г.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ:
  1. Авдеев С.Н. Можно ли улучшить прогноз у больных хронической обструктивной болезнью легких? // Пульмонология. – 2015. – Т. – 25. – № 4. – С. 469–476.
  2. Авдеев С.Н. Значение обострений для пациентов ХОБЛ // Эффективная фармакотерапия. – 2014. –Т. 29. – С. 36–41.
  3. Авдеев С.Н. Стратегии профилактики обострений хронической обструктивной болезни легких //Доктор. Ру. – 2017. – № 10 (139). – С. 40–48.
  4. Авдеев С.Н. Фенотипы хронической обструктивной болезни легких: особенности терапии //Consilium Medicum. Болезни органов дыхания. (Прил.). – 2010. – № 1. – С. 23–26.
  5. Айсанов З.Р., Калманова Е.Н., Стулова О.Ю. Фенотип хронической обструктивной болезни легких с частыми обострениями и современная противовоспалительная терапия // Пульмонология. – 2013. – № 1. – С. 68–76.
  6. Архипов В.В. Средства доставки препаратов для больных хронической обструктивной болезнью легких // Практическая пульмонология. – 2019. – № 2. – С. 12–17.
  7. Архипов В.В., Архипова Д.Е., Стукалина Е.Ю., Лазарев А.А. Частота встречаемости отдельных фенотипов хронической обструктивной болезни легких в российской Федерации, их характеристики и подходы к лечению // Практическая пульмонология. – 2016. – № 3. – С. 20–25.
  8. Дворецкий Л.И. Пожилой больной ХОБЛ: стратегия и тактика бронхолитической терапии // Практическая пульмонология. – 2006. – № 4.
  9. Карнаушкина М.А., Федосенко С.В., Сазонов А.Э., Петров В.А., Ваколюк Р.М., Дворецкий Л.И., Огородова Л.М. Сложности прогнозирования течения ХОБЛ как вызов современной клиническойпульмонологии // Архивъ внутренней медицины. – 2016. – № 4 (30).
  10. Лещенко И.В., Баранова И.И. Биомаркеры воспаления при хронической обструктивной болезни легких // Пульмонология. – 2012. – Т. 22. – № 2. – С. 108–117.
  11. Овчаренко С.И. Фенотипы больных хронической обструктивной болезнью легких и исследование ECLIPSE: первые результаты // Пульмонология. – 2011. – № 3. – С. 113–117.
  12. Сычев Д.А. Полипрагмазия в клинической практике: проблема и решения / под общ. ред. Д.А. Сычева; науч. ред. В.А. Отделенов. Руководство для врачей. СПб.: ЦОП ≪Профессия≫. – 2016. – 224 c.
  13. Хроническая обструктивная болезнь легких: профилактика обострений. Клинические рекомендации Американской коллегии торакальных врачей и Канадского торакального общества (часть 2‑я) // Пульмонология. – 2016. – № 26 (3). – С. 267–291.
  14. Чучалин А.Г., Авдеев С.Н., Айсанов З.Р., Белевский А.С., Лещенко И.В., Мещерякова Н.Н., Овчаренко С.И., Шмелев Е.И. Российское респираторное общество. Федеральные клинические рекомендации по диагностике и лечению хронической обструктивной болезни легких // Пульмонология. – 2014. – № 3. – С. 15–54.
  15. Bosnic-Anticevich S.Z. Inhaler device handling: have we really started to address the problem? Eur. Respir. J., 2017, no. 49, 1700120.
  16. Burrows B., Bloom J.W., Traver G.A. et al. The course and prognosis of different forms of chronic airways obstruction in a sample from the general population. N. Engl. J. Med., 1987, vol. 317, pp. 1309–1314.
  17. Brightling C.E. Chronic obstructive pulmonary disease phenotypes, biomarkers, and prognostic indicators. Allergy Asthma Proc., 2016, vol. 37, pp. 432–438.
  18. Crompton G.K., Barnes P.J., Broeders M. et al. The need to improve inhalation technique in Europe: a report by the Aerosol Drug Management Improvement Team. Respir. Med., 2006, vol. 100, pp. 1479–1494.
  19. Donaldson G.C., Seemungal T.A., Bhowmilk A. et al. Relationship between exacerbation frequency and lung function decline in chronic obstructive pulmonary disease. Thorax, 2002, vol. 57, pp. 847–852.
  20. Garcia-Aymerich J., Agusti А., BarberаJ.A. et al. Phenotypic heterogeneity of chronic obstructive pulmonary disease. Arch. Bronconeumol., 2009, vol. 45, pp. 133–142.
  21. Global initiative for chronic obstructive lung disease. Global strategy for the diagnosis, management, and prevention of chronic obstructive pulmonary disease. Revised 2017. [Electronic resource]. Mode of access: www.goldcopd.com (date of referral: 19.04.18).
  22. Goris S., Tasci S., Elmali F. The effects of training on inhaler technique and quality of life in patients with COPD. J. Aerosol. Med. Pulm. Drug. Deliv., 2013, vol. 26, pp. 336–344.
  23. Han M.K., Agusti A., Calverley P.M. et al. Chronic obstructive pulmonary disease phenotypes: The future of COPD. Am. J. Respir. Crit. Care Med., 2010, vol. 182, pp. 598–604.
  24. Hurst J.R., Vestbo J., Anzueto A. et al. Susceptibility to exacerbation in chronic obstructive pulmonary disease. N. Engl. J. Med. 2010, vol. 363, pp. 1128–1138.
  25. Price D.B. et al. Inhaler Errors in the CRITIKAL Study: Type, frequency, and association with asthma outcomes. The Journal of Allergy and Clinical Immunology: In Practice, 2017, vol. 5, pp. 1071–1081.
  26. Jalota L., Jain V.V. Action plans for COPD: strategies to manage exacerbations and improve outcomes. Int. J. Chron. Obstruct. Pulmon. Dis., 2016, vol. 11, pp. 1179–1188. doi:10.2147/COPD.S76970
  27. Menezes A.M., Montes de Oca M., Perez-Padilla R. et al. Increased risk of exacerbation and hospitalization in subjects with an overlap phenotype: COPDasthma. Chest, 2014, vol. 145 (2), pp. 297–304.
  28. Miravitlles M., Ferrer M., Pont A. et al. Effect of exacerbation on quality of life in patients with chronic obstructive pulmonary disease. A 2 year follow-up study. Thorax, 2004, vol. 59, pp. 387–395.
  29. Miravitlles M., Guerrero T., Mayordomo C. et al. Factors associated with increased risk of exacerbation and hospital admission in a cohort of ambulatory COPD patients: a multiple logistic regression analysis. Respiration, 2000, vol. 67, pp. 495–501.
  30. Molimard M., Raherison C., Lignot S. et al. Chronic obstructive pulmonary disease exacerbation and inhaler device handling: real-life assessment of 2935 patients. Eur. Respir. J., 2017, vol. 49, pp. 1601–1794.
  31. Roversi S., Hawkins N.M. Time to move from prognostication to diagnosis and treatment of heart disease in acute exacerbation of COPD. Eur. Respir. J., 2017, vol. 49, pp. 1700–1912.
  32. Seemungal T.A.R., Donaldson G.C., Paul E.A. et al. Effect of exacerbation on quality of life in patients with chronic obstructive pulmonary disease. Am. J. Respir.Crit. Care. Med., 1998, vol. 157, pp. 1418–1422.
  33. Sundh J., Johansson G., Larsson K. et al. The phenotype of concurrent chronic bronchitis and frequent exacerbations in patients with severe COPD attending Swedish secondary care units. Int. J. Chron. Obstruct. Pulmon. Dis., 2015, vol. 10, pp. 2327–2334.
  34. Yawn B.P., Li Y., Tian H., Zhang J., Arcona S., Kahler K.H. Inhaled corticosteroid use in patients with chronic obstructive pulmonary disease and the risk of pneumonia: a retrospective claims data analysis. Int. J. Chron. Obstruct. Pulmon. Dis., 2013, vol. 8, pp. 295–304.
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА:

хроническая обструктивная болезнь легких (ХОБЛ), фенотип болезни, лечение, полипрагмазия, техника ингаляций.

ДЛЯ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ:

ГАУЗ ≪Городская клиническая больница № 16≫

420039, г. Казань, ул. Гагарина, д. 121

Кудрявцева Эльвира Зуферовна – зав. отделением пульмонологии, врач-пульмонолог

Тел.: +7 (917) 269-68-88

Е-mail: elk-a@inbox.ru

ФГБНУ ≪Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза≫

107564, г. Москва, Яузская аллея, д. 2

Макарьянц Наталья Николаевна – д.м.н., ведущий научный сотрудник отдела дифференциальнойь диагностики туберкулеза легких и экстракорпоральных методов лечения

Тел.: +7 (499) 785-91-56

Е-mail: roman4000@yandex.ru

АО Группа компаний ≪Медси≫, Клинико-диагностический центр ≪Медси на Белорусской≫

123056, г. Москва, Грузинский переулок, д. 3А

Никитина Лидия Юрьевна – доктор мед. наук, врач

Тел.: +7 (908) 882-86-20

Е-mail: lidiya_nikitina@mail.ru

ХИРУРГИЧЕСКОЕ ЛЕЧЕНИЕ БРОНХОПЛЕВРАЛЬНЫХ ОСЛОЖНЕНИЙ ПОСЛЕ ПНЕВМОНЭКТОМИИ У БОЛЬНЫХ ТУБЕРКУЛЕЗОМ

Статья 6.Страница 49.
НАЗВАНИЕ СТАТЬИ:

ХИРУРГИЧЕСКОЕ ЛЕЧЕНИЕ БРОНХОПЛЕВРАЛЬНЫХ ОСЛОЖНЕНИЙ ПОСЛЕ ПНЕВМОНЭКТОМИИ У БОЛЬНЫХ ТУБЕРКУЛЕЗОМ

DOI: 10.7868/S2587667820020065

АВТОРЫ:

Гиллер Д.Б.1, Кесаев О.Ш.1, Эргешов А.Э.2, Короев В.В.1, Глотов А.А.1, Гаджиева П.Г.1, Глотов Е.М.1, Имагожев Я.Г.3, Пехтусов В.А.4, Нематов О.Н.5

1 ФГАОУ ВО Первый МГМУ им. И.М. Сеченова МЗ РФ (Сеченовский Университет), г. Москва, Россия

2 ФГБНУ «Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза», г. Москва, Россия

3 ФГБОУ ВО «Ингушский государственный университет», г. Назрань, Россия

4 ГБУЗ «Тамбовский областной клинический противотуберкулезный диспансер», Тамбовская область, Россия

5 Республиканский специализированный научно-практический медицинский центр фтизиатрии и пульмонологии, г. Ташкент, Р. Узбекистан

ОПИСАНИЕ:

Цель исследования: повышение эффективности хирургического лечения бронхоплевральных осложнений после пневмонэктомий у больных туберкулезом (ТБ) за счет разработки современных показаний, тактики, техники лечения и методики послеоперационного ведения.

Материалы и методы. Проанализированы истории болезней 114 пациентов, которым были выполнены различные варианты хирургических вмешательств по поводу бронхоплевральных осложнений после пневмонэктомий в период с 2004 по 2010 гг. на базе Центрального НИИ туберкулеза РАМН и в период с 2011 по 2017 гг. в клинике фтизиопульмонологии Первого МГМУ им. И.М. Сеченова. Для более объективной оценки результатов исследования в зависимости от наличия или отсутствия бронхиального свища пациенты были разделены на две группы: I группа – пациенты c эмпиемой и бронхиальным свищем, II группа – пациенты с эмпиемой без бронхиального свища.

Результаты. В I группе в результате хирургического лечения добиться ликвидации эмпиемы и бронхиального свища удалось в 57 (86,4%) случаях, у пациентов II группы постпневмонэктомическая эмпиема была излечена во всех случаях. Госпитальная летальность в I группе составила 9% (6 случаев), во II группе случаев госпитальной летальности не было. Таким образом, общая эффективность лечения бронхоплевральных осложнений составила 92,1%.

Заключение. Развитие бронхоплевральных осложнений после пневмонэктомии является тяжелой клинической ситуацией, требующей сложных, часто многоэтапных хирургических вмешательств. Однако с применением рекомендованной тактики и техники хирургического лечения возможно достижение высокой эффективности при низких показателях рецидивов и летальности.

Поступила 12.03.2020 г.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ:
  1. Баженов А.В., Хольный П.М., Кардапольцев Л.В., Цвиренко А.С., Басыров Р.Т., Мотус И.Я. Опыт лечения свища культи правого главного бронха с применением сосудистого окклюдера // Туберкулез и болезни легких. – 2017. – Т. 95. – № 1. – С. 53–55.
  2. Горелов Ф.И. Хирургическое лечение бронхиальных свищей после пневмонэктомии // Хирургия. –– № 6. – С. 85–89.
  3. Левин А.В., Цеймах Е.А., Зимонин П.Е. Применение клапанной бронхоблокации при осложненном туберкулезе легких // Эндоскопия. – 2012. – № 1. –С. 15–17.
  4. Назыров Ф.Г., Худайбергенов Ш.Н., Пахомов Г.Л. Особенности лечебной тактики у пациентов с бронхоплевральными свищами после перенесенной пневмонэктомии // Вестник экспериментальной и клинической хирургии. – 2010. – № 4. – С. 305–307.
  5. Наумов В.Н., Шайхаев А.Я., Абрамов Э.Л., Нажмеденов А.П. Пульмонэктомия во фтизиатрии // Проблемы туберкулеза. – 1991. – № 11. – С. 40–43.
  6. Печетов А.А., Грицюта А.Ю., Давыденко П.И. Трансстернальная окклюзия культи главного бронха при бронхоплевральном свище и неспецифической эмпиеме плевры // Хирургия. Журнал имени Н.И. Пирогова. – 2019. – № 7. – С. 5–9.
  7. Слободенюк И.Ф., Полежаев А.А. Хирургическое лечение бронхиальных свищей после пневмонэктомии // Грудная и сердечно-сосудистая хирургия. – 2012. – № 1. – С. 36–39.
  8. Шилова М.В. Организация противотуберкулезной помощи в России и пути модернизации организационно-методического управления диспансерным наблюдением больных туберкулезом в современных эпидемических и социально-экономических условиях // Туберкулез и болезни легких. IХ съезд фтизиатров России. – 2011. – С. 236–237.
  9. Яблонский П.К., Соколович Е.Г., Аветисян А.О., Васильев И.В. Роль торакальной хирургии в лечении туберкулеза легких (обзор литературы и собственные наблюдения) // Медицинский альянс. – № 3. – С. 4–10.
  10. Andreetti C., Menna C., D’Andrilli A., Ibrahim M., Maurizi G., Poggi C., Fiorelli A. Multimodal treatment for postpneumonectomy bronchopleural fistula associated with empyema. The Annals of Thoracic Surgery, 2018, vol. 106, no. 6, pp. 337–339.
  11. Athanassiadi K., Kalavrouziotis G., Bellenis I. Bronchopleural fistula after pneumonectomy: a major challenge. Acta. Chir. Hung., 1999, vol. 38, no. 1, pp. 5–7.
  12. Bai L., Hong Z., Gong C., Yan D., Liang Z. Surgical treatment efficacy in 172 cases of tuberculosisdestroyed lungs. Eur. J. Cardiothorac. Surg., 2011, vol. 41, no. 2, pp. 335–340.
  13. Botianu A.M., Botianu P.V. Modified thoraco-mediastinal plication (Andrews thoracoplasty) for postpneumonectomy empyema: experience with 30 consecutive cases. Interact. Cardiovasc. Thorac. Surg., 2013, vol. 16, no. 2, pp. 173–177.
  14. Boudaya M.S., Smadhi H., Zribi H. Conservative management of postoperative bronchopleural fistulas.
  15. Thorac. Cardiovasc. Surg., 2013, vol. 146, pp. 575–579.
  16. Cardillo G., Carbone L., Carleo F., Galluccio G., Di Martino M., Giunti R. The rationale for treatment of postresectional bronchopleural fistula: analysis of 52 patients. Ann. Thorac. Surg., 2015, vol. 100, pp. 251–257.
  17. Deschamps C., Allen M.S., Miller D.L., Nichols F.C., Pairolero P.C. Management of postpneumonectomy empyema and bronchopleural fistula. Semin. Thorac. Cardiovasc. Surg., 2001, vol. 13, no. 1, pp. 13–19. 17. Fukui T., Matsukura T., Wakatsuki Y., Yamawaki S. Simple chest closure of open window thoracostomy for postpneumonectomy empyema: a case report. Surg. Case Rep., 2019, vol. 5, no. 1, p. 53.
  18. Ginsberg R.J., Saborio D.V. Management of the recalcitrant postpneumonectomy bronchopleural fistula: the transsternal transpericardial approach. Semin. Thorac.Cardiovasc. Surg., 2001, vol. 13, no. 1, pp. 20–26.
  19. Gursoy S., Yazgan S., Ucvet A., Samancilar O., Unal M., Gulmez B., Sirzai E.Y. Post-pneumonectomy bronchopleural fistula in non-small cell lung cancer patients: incidence, survival, mortality, and treatment analysis. Surg. Today, 2018, vol. 48, no. 7, pp. 695–702.
  20. Icard P., Le Rochais J.P., Rabut B., Cazaban S., Martel B., Evrard C. Andrews thoracoplasty as a treatment of post-pneumonectomy empyema: experience in 23 cases. Ann. Thorac. Surg., 1999, vol. 68, no. 4, pp. 1159–1163.
  21. Inage T., Nakajima T., Fujiwara T., Murakami K., Uesato M., Matsubara H. Bronchial embolization with an endobronchial watanabe spigot for broncho-gastric tube fistula. Respiration, 2017, vol. 94, pp. 375–379. 22. Karapinar K., Saydam O., Metin M. Experience with vacuum-assisted closure in the management of postpneumonectomy empyema: an analysis of eight cases. Thorac. Cardiovasc. Surg., 2015, vol. 64, no. 3, pp. 258–262.
  22. Laserson K.F., Thorpe L.E., Leimane V. Speaking the same language: treatment outcome definitions for multidrugresistant tuberculosis. Int. J. Tuberc. Lung. Dis., 2005, vol. 9, pp. 640–645.
  23. Mazzella A., Pardolesi A., Maisonneuve P., Petrella F., Galetta D., Gasparri R., Spaggiari L. Bronchopleural fistula after pneumonectomy: risk factors and management, focusing on open-window thoracostomy. Semin. Thorac. Cardiovasc. Surg., 2018, vol. 30, no. 1, pp. 104–113.
  24. Nicolaï M., Siat J., De Runz A., Brix M., Simon E. Use of pedicled dorsal muscle flap combined with negative pressure therapy in the management of postpneumonectomy septic complications. Ann. Chir.Plast. Esthet., 2019, pp. S0294-1260(19)30059-7.
  25. Scordamaglio P.R., Tedde M.L., Minamoto H., Assad R.S., Fernandes P.M.P. Can total bronchopleural fistulas from complete stump dehiscence be endoscopically treated. European Journal of Cardio-Thoracic Surgery, 2017, vol. 51, pp. 702–708.
  26. Spaggiari L., Galetta D. Video-thoracoscopic management of postpneumonectomy empyema. The Thoracicand Cardiovascular Surgeon Thorac. Cardiovasc. Surg., 2018, vol. 66, no. 8, pp. 701–706.
  27. Stern J.-B., Fournel L., Wyplosz B., Girard P., Nakib M., Gossot D., Seguin-Givelet A. Early and delayed postpneumonectomy empyemas: Microbiology, management and prognosis. The Clinical Respiratory Journal, 2017, vol. 12, no. 4, pp. 1753–1761.
  28. Yanagiya M., Matsumoto J., Nagano M., Kusakabe M., Matsumoto Y., Furukawa R., Ohara S., Usui K. Endoscopic bronchial occlusion for post-operative persistent bronchopleural fistula with computed tomography fluoroscopy guidance and virtual bronchoscopic navigation: A case report. Medicine (Baltimore), 2018, vol. 97, no. 7, p. 9921.
  29. Zeng Y., Gao H.Z., Zhang X.B., Lin H.H. Closure of bronchopleural fistula with mesenchymal stem cells: case report and brief literature review. Respiration, 2019, vol. 97, pp. 273–276.
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА:

туберкулез, хирургия, эмпиема, бронхиальный свищ, пневмонэктомия.

ДЛЯ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ:

ФГАОУ ВО Первый Московский Государственный Медицинский Университет им. И.М. Сеченова (Сеченовский университет) Минздрава России

119991, Россия, г. Москва, ул. Трубецкая, д. 8, стр. 2

Гиллер Дмитрий Борисович – д.м.н., профессор, зав. кафедрой фтизиопульмонологии и торакальной хирургии им. М.И. Перельмана

Тел.: +7 (916) 868-12-91

E-mail: Giller-thorax@mail.ru

Кесаев Олег Шамильевич – к.м.н., доцент кафедры фтизиопульмонологии и торакальной хирургии им. М.И. Перельмана

Тел.: +7 (916) 410-39-28

E-mail: olegkesaeff@yandex.ru

Короев Вадим Валерьевич – к.м.н., доцент кафедры фтизиопульмонологии и торакальной хирургии им. М.И. Перельмана

Тел.: +7 (925) 049-37-04

E-mail: koroeff.lancet@yandex.ru

Глотов Алексей Александрович – к.м.н., доцент кафедры фтизиопульмонологии и торакальной хирургии им. М.И. Перельмана

Тел.: +7 (985) 363-04-33

E-mail: alexglot73@mail.ru

Гаджиева Патимат Гаджиевна – ассистент кафедры фтизиопульмонологии и торакальной хирургии

им. М.И. Перельмана

Тел: +7 (996) 148-94-09

E-mail: schuldich9@yandex.ru

Глотов Егор Максимович – аспирант кафедры фтизиопульмонологии и торакальной хирургии им. М.И. Перельмана

Тел.: +7 (916) 826-58-56

E-mail: foxxxgtr13@yandex.ru

ФГБНУ ≪Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза≫

107564, г. Москва, Яузская аллея, д. 2

 Эргешов Атаджан Эргешович – д.м.н., профессор, директор

Тел.: +7 (499) 785-90-19

E-mail: cniit@ctri.ru

ФГБОУ ВО ≪Ингушский государственный университет≫

386132, Р. Ингушетия, г. Назрань, ул. Магистральная д. 39

Имагожев Якуб Гириханович – к.м.н., старший преподаватель кафедры госпитальной терапии медицинского факультета

Тел.: +7 (962) 641-09-89

E-mail: Cell_1980@mail.ru

ГБУЗ ≪Тамбовский областной клинический противотуберкулезный диспансер≫

392513, Тамбовская область, пос. Георгиевский

 Пехтусов Вадим Александрович – зав. отделением

Тел.: +7 (905) 048-51-62

E-mail: Vad-pekhtusov@yandex.ru

Республиканский специализированный научно-практический медицинский центр фтизиатрии и пульмонологии МЗ РУз

100086, Р. Узбекистан, г. Ташкент, ул. Мажлисий, д. 1

Нематов Одилжон Низомиддинович – зав. отделением торакальной хирургии

Тел.: +998 946-476-074

E-mail: dr.odiljon@mail.ru

ПРОФИЛАКТИКА МЕДИАСТИНАЛЬНЫХ ГРЫЖ ПОСЛЕ ПНЕВМОНЭКТОМИЙ С ПОМОЩЬЮ ИНТРАОПЕРАЦИОННОЙ ПЛАСТИКИ ПЕРЕДНЕГО СРЕДОСТЕНИЯ У БОЛЬНЫХ ДЕСТРУКТИВНЫМИ ФОРМАМИ ТУБЕРКУЛЕЗА ЛЕГКИХ И ИЗУЧЕНИЕ ЕЕ ВЛИЯНИЯ НА ФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ ПОКАЗАТЕЛИ

Статья 7.Страница 60.
НАЗВАНИЕ СТАТЬИ:

ПРОФИЛАКТИКА МЕДИАСТИНАЛЬНЫХ ГРЫЖ ПОСЛЕ ПНЕВМОНЭКТОМИЙ С ПОМОЩЬЮ ИНТРАОПЕРАЦИОННОЙ ПЛАСТИКИ ПЕРЕДНЕГО СРЕДОСТЕНИЯ У БОЛЬНЫХ ДЕСТРУКТИВНЫМИ ФОРМАМИ ТУБЕРКУЛЕЗА ЛЕГКИХ И ИЗУЧЕНИЕ ЕЕ ВЛИЯНИЯ НА ФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ ПОКАЗАТЕЛИ

 DOI: 10.7868/S2587667820020077

АВТОРЫ:

Эргешова А.Э.1, Красникова Е.В.1, Пенаги Р.А.1, Салихов Б.У.2, Читорелидзе Г.В.1, Тарасов Р.В.1, Багиров М.А.1

1 ФГБНУ «Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза», г. Москва, Россия

2 ГБУЗ Калужской области «Областная клиническая туберкулезная больница», г. Калуга, Россия

ОПИСАНИЕ:

Проведен анализ результатов пластики переднего средостения для профилактики медиастинальных грыж при пневмонэктомии у 91 больного деструктивным туберкулезом (ТБ) легких. Сравнение результатов хирургического лечения у 49 (53,8%) больных, которым была выполнена пневмонэктомия с пластикой переднего средостения (ППС) и 42 (46,2%) больных, которым пневмонэктомия была выполнена без дополнительных методик, показало эффективность ППС для профилактики формирования либо уменьшения, или сохранения размеров имевшихся до операции легочных медиастинальных грыж (ЛМГ). У больных после интраоперационной ППС наблюдалось также уменьшение степени одышки и нарушений со стороны бронхолегочной системы по основным показателям респираторной функции.

Работа выполнена в рамках темы НИР № 0515-2019-0017 ≪Разработка хирургических методов лечения распространенного туберкулеза органов дыхания и костно-суставной системы≫.

Поступила 16.03.2020 г.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ:
  1. Багиров М.А., Ибриев А.С, Красникова Е.В., Садовникова С.С., Токаев К.В., Токаев Т.К., Эргешов А.Э. Способ профилактики постпневмонэктомического синдрома // Патент на изобретение RU 2614525 от 30.11.2015.
  2. Перельман М.И., Наумов В.Н., Добкин В.Г. и соавт. Показания к хирургическому лечению больных туберкулезом легких // Метод, реком. ЦНИИТ РАМН, НИИ фтизиопульмонологии ММА им. И.М. Сеченова, Московский НПЦ борьбы с туберкулезом. – М. – 2000. – 25 с.
  3. Радионов Б.В., Савенков Ю.Ф. Основные варианты и особенности анатомо-топографических изменений органов грудной полости после пневмонэктомий // Пневмонэктомия (показания, оперативно-технические и клинические аспекты). Днепропетровск. – 2003. – 308 с.
  4. Сербиненко Н.Г., Макаров А.В., Савенков Ю.Ф., Калибуха И.А., Хмель О.В. Оценка функции внешнего дыхания у больных в отдаленный период после выполнения пневмонэктомии // Клiнiчна хiрургiя. – 2001. – № 1 – С. 22–23.
  5. Чучалин А.Г., Авдеев С.Н., Айсанов З.Р., Белевский А.С., Лещенко И.В., Мещерякова Н.Н., Овчаренко С.И., Шмелев Е.И. Российское респираторное общество // Федеральные клинические рекомендации по диагностике и лечению хронической обструктивной болезни легких. Пульмонология. – 2014. – № 3. –С. 15–54. https://doi.org/10.18093/0869-0189-2014-0-3-15-54
  6. Шалимов А.А., Слепуха И.М., Ващенко А.Е. и др. Отдаленный результат применения пневмонэктомии по поводу туберкулеза и хронических неспецифических заболеваний легких // Клiнiч. хiрургiя.– № 11–12. – С. 3–5.
  7. Эпидемическая ситуация по туберкулезу в России, 2018 год // Федеральный центр мониторинга противодействия распространению туберкулеза в РФ – электронный ресурс, режим доступа: https://mednet.ru/images/materials/CMT/2018_god_tuberkulez_epidsituaciya.pdf
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА:

туберкулез, пневмонэктомия, легочная медиастинальная грыжа, пластика переднего средостения, респираторная функция.

ДЛЯ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ:

ФГБНУ ≪Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза≫

107564, г. Москва, Яузская аллея, д. 2, стр. 1 А

Эргешова Ануш Эдуардовна – врач-торакальный хирург 2‑го хирургического отделения отдела хирургии

Тел: +7 (499) 785-90-76

E-mail: dr.akhachatryan@mail.ru

Красникова Елена Вадимовна – д.м.н., с.н.с., зав. операционным блоком отдела хирургии

Тел: +7 (499) 785-91-96

E-mail: el.krasn@gmail.com

Пенаги Рамиль Ниджат Алиевич – м.н.с., врач-торакальный хирург 2‑го хирургического отделения отдела хирургии

Тел: +7 (499) 785-90-76

E-mail: ramilpenagi@gmail.com

Читорелидзе Георгий Валерьевич – врач-торакальный хирург 2‑го хирургического отделения отдела хирургии

Тел: +7 (499) 785-90-76

E-mail: chitorelidze2015@yandex.ru

Тарасов Руслан Вячеславович – м.н.с., врач-хирург 1‑го хирургического отделения отдела хирургии

Тел.: +7 (499) 785-91-96

E-mail: etavnai@yandex.ru

Багиров Мамад-Багир Адил Оглы – д.м.н., зав. отделом хирургии

Тел.: +7 (499) 748-30-14

E-mail: bagirov60@gmail.com

ГБУЗ Калужской области ≪Областная клиническая туберкулезная больница≫

248003, г. Калуга, ул. Максима Горького, д. 85

Салихов Бехруз Умаркулович – зав. туберкулезным легочно-хирургическим отделением

Teл.: +7 (910) 513-51-68

E-mail: bekhruz80@gmail.com

 

РАЗЛИЧНЫЕ АСПЕКТЫ ВНУТРЕННЕЙ КАРТИНЫ БОЛЕЗНИ У ПОДРОСТКОВ, БОЛЬНЫХ ТУБЕРКУЛЕЗОМ ОРГАНОВ ДЫХАНИЯ

Статья 8.Страница 68.
НАЗВАНИЕ СТАТЬИ:

РАЗЛИЧНЫЕ АСПЕКТЫ ВНУТРЕННЕЙ КАРТИНЫ БОЛЕЗНИ У ПОДРОСТКОВ, БОЛЬНЫХ ТУБЕРКУЛЕЗОМ ОРГАНОВ ДЫХАНИЯ

DOI: 10.7868/S2587667820020089

АВТОРЫ:

Золотова Н.В., Ахтямова А.А.

ФГБНУ «Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза», г. Москва, Россия

ОПИСАНИЕ:

Цель исследования – изучение различных компонентов внутренней картины болезни (ВКБ) у подростков, больных туберкулезом органов дыхания (ТОД), а также у родителей пациентов. В исследование были включены 83 пациента в возрасте 13–17 лет, получавших лечение по поводу ТОД в подростковом отделении ФГБНУ ≪ЦНИИТ≫ в период с 2016 по 2019 гг., а также 41 родитель пациентов. Изучение различных аспектов ВКБ проводилось при поступлении на стационарное лечение с помощью специально разработанной анкеты. В результате исследования установлено, что на этапе подготовки к лечению интеллектуальный уровень ВКБ у опрошенных характеризуется недостаточной осведомленностью о заболевании, сроках и особенностях лечения, при этом содержит благоприятную оценку перспектив лечения. Мотивационный уровень ВКБ у подростков характеризуется негативным отношением к собственному статусу пациента с заболеванием ≪туберкулез≫. В структуре ВКБ у подростков и их родителей наиболее выражен и эмоциональный компонент, который отличается напряженным отношением к предстоящей противотуберкулезной химиотерапии, страхом перед изменением положения в привычной социальной среде, восприятием болезни как преграды к достижению значимых целей.

Поступила 30.03.2020 г.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ:
  1. Бондаренко С.М., Смирнов В.В., Даниленко О.В., Петряйкина Е.Е. Особенности внутренней картины болезни у детей и подростков, больных сахарным диабетом I типа // Педиатрия. – 2006. – № 4. – С. 22–27.
  2. Громыко Е.В., Соколова Э.А. Исторический аспект внутренней картины болезни (обзор литературы) // Проблемы здоровья и экологии. – 2012. – № 1 (31). – С. 37–44.
  3. Данилов Д.С. Терапевтическое сотрудничество (комплаенс): содержание понятия, механизмы формирования и методы оптимизации // Неврология, нейропсихиатрия, психосоматика. – 2014. – № 2. — С. 4–12.
  4. Исаев Д.Н. Детская медицинская психология. Психологическая педиатрия. – СПб.: Речь, 2004. – 384 с.
  5. Куртанова Ю.Л. Внутренняя картина болезни детей с различными соматическими заболеваниями // Вопросы психического здоровья детей и подростков. – 2003. – № 3 (2). – С. 16–21.
  6. Лурия Р.А. Внутренняя картина болезни и иатрогенные заболевания. М.: Медицина, 1977. – С. 37–52.
  7. Николаева В.В. Влияние хронической болезни на психику. М. – 1987. – 168 с.
  8. Опрос: только треть россиян знают о существовании вакцины против туберкулеза [Электронный ресурс]. – Режим доступа: https://tass.ru/obschestvo/8060731
  9. Савич Н.В. Внутренняя картина болезни у подростков, больных туберкулезом с разными типами привязанности // Молодой ученый. – 2017. –№ 49. – С. 430–433.
  10. Свистунова Е.И. Как ребенок воспринимает болезнь // Медицинская сестра. – 2012. – № 2.
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА:

туберкулез, подростки, приверженность к лечению, внутренняя картина болезни.

ДЛЯ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ:

ФГБНУ ≪Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза≫

107564, г. Москва, Яузская аллея, д. 2.

Золотова Наталья Владимировна – кандидат психологических наук, старший научный сотрудник лаборатории изучения психологических проблем туберкулеза отдела фтизиатрии

Тел. +7 (499) 785-91-54

Е-mail: Zolotova_n@mail.ru

Ахтямова Альмира Ахнафовна – кандидат психологических наук, старший научный сотрудник лаборатории изучения психологических проблем туберкулеза отдела фтизиатрии

Тел. +7 (499) 785-90-05

Е-mail: bliznec18@bk.ru

РЕЗУЛЬТАТЫ ИММУНОДИАГНОСТИКИ ТУБЕРКУЛЕЗА У ПАЦИЕНТОВ ПУЛЬМОНОЛОГИЧЕСКОГО ОТДЕЛЕНИЯ ОБЩЕСОМАТИЧЕСКОГО СТАЦИОНАРА

Статья 9.Страница 74.
НАЗВАНИЕ СТАТЬИ:

РЕЗУЛЬТАТЫ ИММУНОДИАГНОСТИКИ ТУБЕРКУЛЕЗА У ПАЦИЕНТОВ ПУЛЬМОНОЛОГИЧЕСКОГО ОТДЕЛЕНИЯ ОБЩЕСОМАТИЧЕСКОГО СТАЦИОНАРА

DOI: 10.7868/S2587667820020090

АВТОРЫ:

Небесная Е.Ю.1, Бахшиева Л.И.1, Багишева Н.В.1, Дубровская И.И.2,

Зенкова Л.А.3, Мордык Д.И.4, Моисеева М.В.1

1 ФГБОУ ВО «Омский государственный медицинский университет» Минздрава России, г. Омск, Россия

2 БУЗОО «Больница скорой медицинской помощи № 2», г. Омск, Россия

3 БУЗОО «Городская клиническая больница № 11», г. Омск, Россия

4 ФКУ ГБ МСЭ по Омской области Минтруда России, г. Омск, Россия

ОПИСАНИЕ:

В статье рассмотрены проблемы раннего выявления туберкулеза (ТБ) и роль реакций на пробы Манту с 2 ТЕ и с диаскинтестом в дифференциальной диагностике ТБ у пациентов, госпитализированных в пульмонологическое отделение многопрофильного стационара по неотложной помощи. Проанализированы 103 медицинские карты стационарных больных (форма 003/у) и проведен сравнительный анализ полученных результатов, на основании которого прослеживается существенная связь между положительными результатами реакций на пробу Манту с 2 ТЕ и с диаскинтестом, и частотой выявления ТБ.

Поступила 24.12.2019 г.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ:
  1. Аксенова В.А., Леви Д.Т., Александрова Н.В., Кудлай Д.А. Современное состояние вопроса заболеваемости детей туберкулезом // Биопрепараты. Профилактика, диагностика, лечение. – 2017. – Т. 17, № 3. – С. 145–151.
  2. Бородулина Е.А., Бородулин Б.Е., Инькова Т.А., Вдоушкина Е.С., Поваляева Л.В. Некоторые возможности диагностики туберкулеза в пульмонологическом отделении стационара // Пульмонология. – 2019. – № 3. – С. 321–326.
  3. Васильева И.А., Белиловский Е.М., Борисов С.Е., Стерликов С.А. Заболеваемость, смертность и распространенность как показатели бремени туберкулеза в регионах ВОЗ, странах мира и Российской Федерации // Туберкулез и болезни легких. – 2017. – № 6 (95). – С. 9–21.
  4. Кравченко Е.Н., Мордык А.В., Валеева Г.А., Пузырева Л.В. Аспекты прерывания беременности у женщин с активным туберкулезом легких // Акушерство и гинекология. – 2014. – № 8. – С. 100–105.
  5. Кравченко Е.Н., Мордык А.В., Валеева Г.А., Пузырева Л.В. Репродуктивное здоровье женщин с активным туберкулезом легких // Доктор.Ру. – 2015. – № 1 (102). – С. 5–8.
  6. Мордык А.В., Багишева Н.В., Иванова О.Г., Батищева Т.Л., Бекмухамбетова Н.В. Клинико-эпидемиологические особенности туберкулеза верхних и нижних дыхательных путей у больных с хроническими неспецифическими заболеваниями легких // Folia Otorhinolaringologiae et Pathologiae Respiratoriae. – 2016. – Т. 22. – № 1. – С. 84–90.
  7. Мордык А.В., Иванова О.Г., Ситникова С.В. Туберкулез в сочетании с ВИЧ-инфекцией: причины неудач в лечении // Омский научный вестник. – 2015. – № 2 (144). – С. 23–26.
  8. Мордык А.В., Иванова О.Г., Сулим Д.А., Багишева Н.В. Хроническая обструктивная болезнь легких и сопутствующая инфекционная патология // Лечащий врач. – 2014. – № 10. – С. 14–16.
  9. Нечаева О.Б. Эпидемиологическая ситуация по туберкулезу в России // Туберкулез и болезни легких. – 2018. – № 8 (96). – С. 15–24.
  10. Пузырева Л.В., Мордык А.В., Татаринцева М.П., Руднева С.Н. Вклад ВИЧ-инфекции в развитие эпидемической ситуации по туберкулезу на территории региона Западной Сибири // Дальневосточный медицинский журнал. – 2017. – № 4. – С. 36–40.
  11. Романова М.А., Мордык А.В. Влияние возраста и сопутствующей патологии на структуру клинических форм туберкулеза, метод его выявления и результаты кожных иммунологических тестов //Забайкальский медицинский вестник. – 2015. – № 3. – С. 67–72.
  12. Руденко С.А., Мордык А.В., Багишева Н.В., Емельянова Ю.А. Сравнительные аспекты бактериологической диагностики, течения и результатов лечения впервые выявленного туберкулеза, изолированного и при его сочетании с хронической обструктивной болезнью легких // Курский научнопрактический вестник «Человек и его здоровье». – 2017. – № 3. – С. 49–54.
  13. Самородов Н.А., Кибишев В.М., Тилова Л.А., Сабанчиева Ж.Х., Павлова М.В., Сафонова В.В., Болотокова А.В. Анализ результатов применения аллергена туберкулезного рекомбинантного ≪Диаскинтест≫у больных с заболеваниями органов дыхания // Вестник новых медицинских технологий. – 2019. – № 2. – С. 114–119.
  14. Серегина В.А., Будрицкий А.М. Современные возможности диагностики туберкулеза легких // Вестник ВГМУ. – 2016. – Т. 15, № 4. – С. 7–17.
  15. Скорняков С.Н., Шульгина М.В., Журавлев В.Ю., Тотолян А.А. Фтизиатрия. Национальные клинические рекомендации. – М., 2015. – 240 с.
  16. Скорняков С.Н., Шульгина М.В., Ариэль Б.М., Баласанянц Г.С. Клинические рекомендации по этиологической диагностике туберкулеза // Медицинский альянс. – 2014. – № 3. – С. 39–58.
  17. Туберкулез. Всемирная организация здравоохранения URL: https://www.who.int/ru/news-room/fact-sheets/detail/tuberculosis(дата обращения: 02.04.2019).
  18. Mendez-Samperio P. Diagnosis of Tuberculosis in HIV Co-infected Individuals: Current Status, Challenges and Opportunities for the Future. Scand. J. Immunol., 2017, vol. 86, no. 2, pp. 76–82.
  19. Nikitina I.Y., Karpina N.L., Kasimceva O.V., Gergert V.Y. Comparative performance of QuantiFERON-TB Gold versus skin test with tuberculosis recombinant allergen (Diaskintest) among patients with suspected pulmonary tuberculosis in Russia. Int. J. Infect. Dis., 2019, vol. 86, pp. 18–24.
  20. Starshinova A., Zhuravlev V., Dovgaluk I., Panteleev A. A comparison of intradermal test with recombinant tuberculosis allergen (diaskintest) with other immunologic tests in the diagnosis of tuberculosis infection Int. J. Mycobacteriol., 2018, vol. 7, no. 1, pp. 32–39.
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА:

туберкулез, проба Манту, проба с диаскинтестом, противотуберкулезные мероприятия, Mycobacterium tuberculosis, флюорография.

ДЛЯ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ:

ФГБОУ ВО ≪Омский государственный медицинский университет≫ Минздрава России,

644099, г. Омск, ул. Ленина, д. 12

Небесная Екатерина Юрьевна – студентка 6 курса лечебного факультета

Тел.: +7 (913) 689-10-59

Е-mail: nebesnay_katya97@mail.ru

Бахшиева Лейла Ильгамовна – студентка 6 курса лечебного факультета

Тел.: +7 (908) 102-60-98

Е-mail: butter27fly@mail.ru

Багишева Наталья Викторовна – к.м.н., ассистент кафедры внутренних болезней и поликлинической терапии

Тел.: +7 (923) 672-00-20

Е-mail: ppi100@mail.ru

Моисеева Марина Викторовна – к.м.н., ассистент кафедры поликлинической терапии и внутренних болезней

Тел.: +7 (913) 607-43-42

Е-mail: lisnyak80@mail.ru

БУЗОО ≪Больница скорой медицинской помощи № 2≫

644021, г. Омск, ул. Л. Чайкиной, д. 3

Дубровская Ирина Игоревна – зав. пульмонологическим отделением

Тел.: +7 (3812) 32-19-15

Е-mail: gkbsmp2@yandex.ru

БУЗОО ≪Городская клиническая больница № 11≫

644105, г. Омск, ул. Нахимова, д. 55

Зенкова Людмила Алексеевна – зав. пульмонологическим отделением

Тел.: +7 (3812) 28-43-94

Е-mail: muzgkb11@mail.ru

ФКУ ГБ МСЭ по Омской области Минтруда России

644070, г. Омск, ул. 10 лет Октября, д. 74

Мордык Дмитрий Иванович – врач-эксперт

Тел.: +7 (3812) 53-12-36

Е-mail: gbmse55@fbmse.ru

КОМПЛЕКСНЫЙ ПОДХОД К ЛЕЧЕНИЮ ТУБЕРКУЛЕЗА ЛЕГКИХ У РЕБЕНКА ИЗ СЕМЕЙНОГО ОЧАГА ИНФЕКЦИИ С МНОЖЕСТВЕННОЙ ЛЕКАРСТВЕННОЙ УСТОЙЧИВОСТЬЮ ВОЗБУДИТЕЛЯ И ПОЗДНИМ ВЫЯВЛЕНИЕМ

Статья 10.Страница 82.
НАЗВАНИЕ СТАТЬИ:

КОМПЛЕКСНЫЙ ПОДХОД К Л ЕЧЕНИЮ ТУБЕРКУЛЕЗА ЛЕГКИХ У РЕБЕНКА ИЗ СЕМЕЙНОГО ОЧАГА ИНФЕКЦИИ С МНОЖЕСТВЕННОЙ ЛЕКАРСТВЕННОЙ УСТОЙЧИВОСТЬЮ ВОЗБУДИТЕЛЯ И ПОЗДНИМ ВЫЯВЛЕНИЕМ

DOI: 10.7868/S2587667820020107

АВТОРЫ:

Губкина М.Ф.1,2, Стерликова С.С.1, Петракова И.Ю.1, Хохлова Ю.Ю.1, Юхименко Н.В.1

1 ФГБНУ «Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза», г. Москва, Россия

2 ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова» Минздрава России, г. Москва, Россия

ОПИСАНИЕ:

Представленное клиническое наблюдение демонстрирует позднее выявление туберкулеза (ТБ) у ребенка из семейного очага инфекции с множественной лекарственной устойчивостью (МЛУ) микобактерий туберкулеза (МБТ), связанное как с недостатками диспансерного наблюдения по контакту с больными ТБ родителями, так и низкой приверженностью к лечению источников инфекции. Проведение химиотерапии в соответствии с сохраненной лекарственной чувствительностью МБТ и переносимостью противотуберкулезных препаратов (ПТП) в сочетании с хирургическим лечением позволили достичь клинического излечения от ТБ с минимальными остаточными изменениями.

Работа выполнена в рамках НИР № 0515-2019-0016 ≪Персонализированные подходы к лечению туберкулеза органов дыхания у детей и подростков≫.

Поступила 21.02.2020 г.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ:
  1. Абилдаев Т.Ш., Бекембаева Г.С., Кастыкпаева Л.З. Основные факторы риска заболевания в очагах туберкулеза с лекарственной устойчивостью возбудителя // Туб. и болезни легких. – 2014. – № 3. – С. 33–35.
  2. Аксенова В.А., Клевно Н.И., Кавтарашвили С.М., Казаков А.В., Пахлавонова А.Д. Очаг туберкулезной инфекции как риск развития у детей туберкулеза с множественной лекарственной устойчивостью // Туб. и болезни легких. – 2018. – № 1. – С. 11–17.
  3. Аксенова В.А., Клевно Н.И., Казаков А.В., Гордина А.В., Фатыхова Р.Х. Превентивная химиотерапия у детей из очагов туберкулеза с множественной лекарственной устойчивостью возбудителя // Туб. и болезни легких. – 2019. – № 6. – С. 36–43.
  4. Губкина М.Ф., Хохлова Ю.Ю., Овсянкина Е.С., Петракова И.Ю., Юхименко Н.В., Золотова Н.В., Ахтямова А.А. Социальная характеристика очагов туберкулезной инфекции // Туберкулез и социально значимые заболевания. – 2018. – № 2. – С. 59–60.
  5. Губкина М.Ф., Хохлова Ю.Ю., Юхименко Н.В., Петракова И.Ю. Персонифицированные подходы к выбору режима химиотерапии туберкулеза органов дыхания у детей из эпидемических очагов туберкулеза с множественной лекарственной устойчивостью // Туб. и болезни легких. – 2016. – № 9. –С. 24–29.
  6. Губкина М.Ф., Стерликова С.С. Значение скрининговых методов обследования детей в выявлении туберкулеза // Вестник ЦНИИТ. – 2019. – № 3 (8). – С. 13–19.
  7. Лозовская М.Э., Курова А.С., Васильева Е.Б., Клочкова Л.В., Никифоренко Н.А., Мосина А.В. Особенности клинического течения и химиотерапии туберкулеза у детей из очагов с различным спектром лекарственной чувствительности микобактерий // Туб. и болезни легких. – 2019. – № 9. – С. 22–27.
  8. Панова Л.В., Овсянкина Е.С., Гиллер Д.Б., Кобулашвили М.Г. Алгоритмы лечения деструктивного туберкулеза легких у детей старшего возраста и подростков (впервые выявленных больных и больных, поступивших на повторное лечение) // Туб. и болезни легких. – 2014. – № 1–2. – С. 121–126.
  9. Паролина Л.Е., Баринбойн О.Н., Лакторова Н.П. Приверженность к лечению впервые выявленных больных лекарственно-устойчивым туберкулезом // Туб. и болезни легких. – 2011. – № 5. – С. 100–101.
  10. Репина О.В., Скорнякова С.Н., Голубкова А.А. К вопросу заболеваемости туберкулезом контактных в семейно-квартирных очагах туберкулезной инфекции // Вестник Уральской медицинской Академии наук. – 2015. – № 1. – С. 3–17.
  11. Старшинова А.А. Диагностика туберкулеза у детей из семейного очага инфекции с применением современных иммунологических и лучевых методов // Практическая медицина. – 2012. – № 1 (56). – С. 74–76.
  12. Старшинова А.А., Довгалюк И.Ф., Павлова М.В. Факторы высокого риска в развитии туберкулеза у детей из семейного очага инфекции // Туб. и болезни легких. – 2014. – № 8. – С. 62–63.
  13. Туберкулез в Российской Федерации 2012/2013/2014 гг. Аналитический обзор статистических показателей по туберкулезу, используемых в Российской Федерации и в мире. – М., 2015. – 312 с.
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА:

туберкулез, дети, очаг туберкулезной инфекции, множественная лекарственная устойчивость, химиотерапия, комплексное лечение.

ДЛЯ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ:

ФГБНУ ≪Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза≫

107564, г. Москва, ул. Яузская аллея, д. 2

ФГАОУ ВО ≪Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова≫ Минздрава России

117997, г. Москва, ул. Островитянова, д. 1

Губкина Марина Федоровна – д.м.н., главный научный сотрудник детско-подросткового отдела ФГБНУ ≪ЦНИИТ≫, профессор кафедры фтизиатрии Российского национального исследовательского медицинского университета им. Н.И. Пирогова Минздрава России

Тел.: +7 (499) 785-90-27

E-mail: detstvocniit@mail.ru

ФГБНУ ≪Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза≫

107564 г. Москва, Яузская аллея, д. 2

Стерликова Светлана Сергеевна – врач детского отделения детско-подросткового отдела

Тел.: +7 (499) 785-90-27

E-mail: detstvocniit@mail.ru

Петракова Ирина Юрьевна – к.м.н., зав. детским отделением детско-подросткового отдела

Тел.: +7 (499) 785-90-27

E-mail: detstvocniit@mail.ru

Хохлова Юлия Юрьевна – врач детского отделения детско-подросткового отдела

Тел.: +7 (499) 785-90-27

E-mail: detstvocniit@mail.ru

Юхименко Наталья Валентиновна – д.м.н., ведущий научный сотрудник детско-подросткового отдела

Тел.: +7 (499) 785-90-27

E-mail: detstvocniit@mail.ru

КУЛЬТУРАЛЬНЫЙ МЕТОД ИССЛЕДОВАНИЯ МИКОБАКТЕРИЙ. ДЕКОНТАМИНАЦИЯ ОБРАЗЦОВ ДИАГНОСТИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА

Статья 11.Страница 89.
НАЗВАНИЕ СТАТЬИ:

КУЛЬТУРАЛЬНЫЙ МЕТОД ИССЛЕДОВАНИЯ МИКОБАКТЕРИЙ. ДЕКОНТАМИНАЦИЯ ОБРАЗЦОВ ДИАГНОСТИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА

DOI: 10.7868/S2587667820020119

АВТОРЫ:

Севастьянова Э.В., Ларионова Е.Е., Андриевская И.Ю., Смирнова Т.Г.

ФГБНУ «Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза», г. Москва, Россия

ОПИСАНИЕ:

Проведен обзор существующих методов предпосевной обработки диагностического материала для культурального исследования на микобактерии (МБ). Изложены основные принципы и рекомендации по предобработке диагностического материала. Приведены наиболее актуальные методики деконтаминации поступающих в лабораторию образцов.

Поступила 18.03.2020 г.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ:
  1. План предупредительного и текущего обслуживания оборудования (ПТО) противотуберкулезной лаборатории. – 2017. WHO. Европейское региональное бюро. http://www.euro.who.int/data/assets/pdf_file/0010/355789/WHO-ELI-TB-Lab-Maintenance-lan_RUS.PDF.
  2. Система инфекционного контроля в противотуберкулезных учреждениях: Руководство/Федорова Л.С., Юзбашев В.Г., Попов С.А., Пузанов В.А., Севастьянова Э.В., Акимкин В.Г., Фролова Н.В., Мясникова Е.Б., Волченков Г.В., Проньков В.А., Наголкин А.В.; под редакцией Л.С. Федоровой. – М. – Тверь: ООО ≪Издательство ≪Триада≫, 2013. – 192 с.
  3. Черноусова Л.Н., Пузанов В.А, Андреевская С.Н., Смирнова Т.Г., Ларионова Е.Е., Попов С.А. Лабораторная диагностика туберкулеза. Методические материалы к проведению цикла тематического усовершенствования. Под редакцией проф. Ерохина В.В., Москва, 2012. – 707 с.
  4. Черноусова Л.Н., Севастьянова Э.В., Ларионова Е.Е., Смирнова Т.Г., Андреевская С.Н., Попов С.А., Журавлев В.Ю., Пузанов В.А., Марьяндышев А.О., Вахрушева Д.В., Кравченко М.А., Сафонова С.Г., Васильева И.А., Эргешов А.Э. Федеральные клинические рекомендации по организации и проведению микробиологической и молекулярно-генетической диагностики туберкулеза. РОФ. – Москва. – 2015. – 35 с.
  5. Angeby K.A., Hoffner S.E., Diwan V.K. Should the ‘bleach microscopy method be recommended for improved case detection of tuberculosis? Literaturereview and key person analysis. Int. J. Tuberc. Lung Dis., 2004, no. 8, pp. 806–815.
  6. Asmar S., Drancourt M. Chlorhexidine decontamination of sputum for culturing Mycobacterium tuberculosis. BMC Microbiol., 2015, vol. 5, no. 15, p. 155.doi: 10.1186/s12866-015-0479-4
  7. British Thoracic Society. Guidelines for the management of non-tuberculosis mycobacteria pulmonary disease (NTM-PD). British Thoracic Society NTM Guideline Development Group, 2018.
  8. Chakravorty S., Tyagi J.S. Novel multipurpose methodology for detection of mycobacteria in pulmonary and extrapulmonary specimens by smear microscopy, culture, and PCR. J. Clin. Microbiol., 2005, no. 43, 2697–2702. Ganoza С.A., Ricaldi J.N., Chauca J., Rojas G., Munayco C., Agapito J., Palmino J.C. and Guerrf H. Novel hypertonic saline-sodium hydroxide (HS-SH) method for decontamination and concentration of sputum samples for Mycobacterium tuberculosis microscopy and culture. Journal of Medical Microbiology, 2008, no. 57,pp. 1094–1098. DOI 10.1099/jmm.0.2008/001339-0
  9. Coronel J.E., Del Carpio C.C., Dianderas E.J., Florentini E.A., Kemper G.L., Sheen P., Zimic M.J. Evaluation of microbiological variants of sputum processing and concentration of mycobacteria to optimize the microscopic and imaging diagnosis of tuberculosis. Int. J. Mycobacteriol., 2019, no. 8 (1), pp. 75–82. doi: 10.4103/ijmy.ijmy_172_18
  10. Daley P., Michael J.S., Latha A., Mathai D. et al. A Pilot Study of Short-duration sputum pretreatment procedures for optimizing smear microscopy for tuberculosis. PLoS ONE, 2009, no. 4 (5), p. e5626. doi: 10.1371/journal.pone.0005626
  11. Desalegn Addise, Adane Bitew, Zelalem Yaregal, Bazezew Yenew, Helina Mollalign, Getu Diriba, and Abebaw Kebede. Effect of 1.5% sodium hydroxide final concentration on recovery rate of mycobacterial species and decontamination of other bacterial and fungal contaminants on sputum. Ethiop. J. Public Health Nutr., 2016, no. 1 (1), pp. 57–67.
  12. Ensa Gitteh, Jacob Kweku Otu, Tijan Jobarteh, Francis Mendy, Isatou Tutty Faal-Jawara, Nana Boatema Ofori-Anyinam, Abigail Ayorinde, Ousman Secka, Florian Gehre. Evaluation of sodium hydroxide-N-acetyl-L-cysteine and 0.7% chlorhexidine decontamination methods for recovering Mycobacterium tuberculosis from sputum samples: A comparative analysis (The Gambia Experience). International Journal of Mycobacteriology, 2016, no. 5, pp. S167–S168.
  13. European Centre for Disease Prevention and Control. Handbook on TB laboratory diagnostic methods for the European Union, Stockholm: ECDC; 2016. Stockholm, 2016, ISBN 978-92-9193-739-4.doi 10.2900/216384
  14. Iseman M.D. A clinician’s guide to tuberculosis. PA, Lippincott Williams and Wilkins, 2000, 460 p.
  15. Kent P.T., Kubica G.P. Public health mycobacteriology: a guide for the level III laboratory. Atlanta, Centers for Disease Control, 1985.
  16. Peres R.L., Maciel E.L., Morais C.G., Ribeiro F.C.K., Vinhas S.A., Pinheiro C., Dietze R., Johnson J.L., Eisenach K., Palaci M. Comparison of two concentrations of NALC-NaOH for decontamination of sputum for mycobacterial culture. J. Tuberculosis Dis., no. 13 (12), pp. 1572–1575.
  17. Perkins M.D. New diagnostic tools for tuberculosis. Int. J. Tuberc. Lung Dis., 2000, no. 4 (suppl. 2),
  18. S182–188. Tuberculosis Control India. http://www.tbcindia.org
  19. Quincó P., Bührer-Sékula S., Brandão W., Monte R., Souza S.L., Saraceni V. et al. Increased sensitivity in the diagnosis of tuberculosis in HIV-positive patients through the small-membrane-filter method of microscopy. J. Clin. Microbiol., 2013, no. 51, pp. 2921–2925.
  20. Satapathy P., Das D., Murmu B.N., Kar S.K. Decontamination of sputum for longer time in sodium hydroxide for isolation of Mycobacterium tuberculosis. International Journal of Mycobacteriology, vol. 3, no. 4, 290–292. doi.org/10.1016/j.ijmyco.2014.09.006
  21. Sohail M. Tuberculosis: A re-emerging enemy. J. Mol.Genet. Med., 2006, no. 2, pp. 87–88.
  22. Steingart K.R., Ng V., Henry M., Hopewell P.C., Ramsay A., Cunningham J. et al. Sputum processing methods to improve the sensitivity of smear microscopy for tuberculosis: A systematic review. Lancet Infect. Dis., 2006, no. 6, pp. 664–674.
  23. Trebucq A. Revisiting sputum smear microscopy. Int.J. Tuberc. Lung Dis., 2004, no. 8, p. 805.
  24. Van Deun A., Maug A.K., Cooreman E. et al. Bleach sedimentation method for increased sensitivity of sputum smear microscopy: does it work? Int. J. Tuberc.Lung Dis., 2000, no. 4, pp. 371–376.
  25. World Health Organization. Global Tuberculosis Report. Geneva, WHO, 2018. Available from: http://www.apps.who.int/iris/bitstream/handle/10665/274453/9789241565646‑eng.pdf. (Last accessed on 2018 Dec 15).
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА:

микобактерии, культуральный метод, диагностический материал, деконтаминация.

ДЛЯ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ:

ФГБНУ ≪Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза≫

107564, г. Москва, Яузская аллея, д. 2

Севастьянова Элина Викторовна – д.б.н., ведущий научный сотрудник отдела микробиологии

Тел.: +7 (499) 785-90-91

Е-mail: elinasev@yandex.ru

 Ларионова Елена Евгеньевна – к.б.н., старший научный сотрудник отдела микробиологии

Тел.: +7 (499) 785-90-91

Е-mail: larionova_lena@mail.ru

Андриевская Ирина Юрьевна – научный сотрудник отдела микробиологии

Тел.: +7 (499) 785-90-91

Е-mail: andrievskaya.iri@mail.ru

Смирнова Татьяна Геннадьевна – к.м.н., старший научный сотрудник отдела микробиологии

Тел.: +7 (499) 785-90-91

Е-mail: s_tatka@mail.ru

ПАМЯТИ ВИКТОРА ПЕТРОВИЧА ФИЛИППОВА

Статья 12.Страница 100.
НАЗВАНИЕ СТАТЬИ:

ПАМЯТИ ВИКТОРА ПЕТРОВИЧА ФИЛИППОВА

АВТОРЫ: 
ОПИСАНИЕ:

10 апреля 2020 г. на 92‑м году ушел из жизни ветеран ФГБНУ ≪ЦНИИТ≫ доктор медицинских наук, профессор, Заслуженный деятель науки Российской Федерации Виктор Петрович Филиппов.

В.П. Филиппов родился 24 марта 1928 г. в г. Коломне. В 1951 г. он окончил Первый Московский медицинский институт, а в 1952 г. – военно-медицинский факультет при Куйбышевском медицинском институте. После окончания института до 1956 г. В.П. Филиппов служил в рядах Советской Армии в качестве врача медсанчасти. Демобилизовавшись, В.П. Филиппов поступил в клиническую ординатуру при Московском институте туберкулеза Минздрава РСФСР, где учился с 1956 по 1958 г. По окончании ординатуры в течение года он работал хирургом в главной противотуберкулезной больнице МВД СССР, а с ноября 1959 г. по приглашению акад. Л.К. Богуша Виктор Петрович начал работать в хирургическом отделении ЦНИИТ Минздрава СССР. После защиты кандидатской диссертации в 1964 г. на тему ≪Опыт клинического применения аппарата УКЛ при резекции легких у больных туберкулезом≫ В.П. Филиппов был назначен руководителем бронхологического отделения ЦНИИТ Минздрава СССР. Продолжая работать в тесном сотрудничестве с акад. Л.К. Богушем, В.П. Филиппов много времени уделял бронхологическим исследованиям больных хирургического отделения, прошел специализацию по эндоскопическим исследованиям бронхов в Германии у проф. Фриделя (г. Лоетау). В 1970 г. В.П. Филиппов защитил докторскую диссертацию на тему ≪Клиническое значение бронхологических исследований под наркозом≫. В.П. Филиппов стал одним из ведущих специалистов страны в области бронхологической инструментальной диагностики заболеваний органов дыхания. Он впервые в СССР разработал и внедрил в практику методику поднаркозной бронхоскопии и комплексной бронхобиопсии при различных заболеваниях легких, доказал целесообразность и эффективность трансбронхиальной биопсии легкого под рентгентелевизионным контролем и бронхоальвеолярного лаважа при диссеминированных заболеваниях легких. Его исследования по эндоскопическим вмешательствам нашли широкое применение во фтизиопульмонологии. В 1980 г. В.П. Филиппову было присвоено звание профессора. С 1975 по 2002 г. он возглавлял работу клинико-диагностического отдела ЦНИИТ РАМН, принимал участие в работе съездов фтизиатров и конгрессах по фтизиопульмонологии в нашей стране, а также странах Европы, где пропагандировал достижения отечественной медицины.

В.П. Филиппов опубликовал более 250 научных работ, в том числе 3 монографии: ≪Бронхологические исследования в дифференциальной диагностике туберкулеза≫ (1979), ≪БАЛ при

дифференциальных поражениях легких≫ (2006) и ≪Бронхоскопия при заболеваниях легких≫ (2014),

он соавтор ряда монографий (≪Туберкулез органов дыхания≫, ≪Саркоидоз≫, ≪Клиническая эндоскопия ≫), статей в медицинских энцикопедиях и методических указаний по различным видам эндоскопической биопсии и лазерной технологии.

Под руководством профессора В.П. Филиппова были подготовлены и успешно защищены 35 диссертаций, в том числе 3 докторские. Виктор Петрович щедро делился своим богатым профессиональным опытом, он стал учителем для многих высококвалифицированных эндоскопистов‑бронхологов, которые продолжают работать в России и странах ближнего зарубежья. За медицинскую и общественную деятельность профессор В.П. Филиппов был удостоен почетного звания Заслуженный деятель науки Российской Федерации≫ (1996) и ряда правительственных наград.

Светлую память о Викторе Петровиче будут хранить многие его ученики и люди, работавшие с ним в ЦНИИТ долгие годы. Администрация и сотрудники ФГБНУ ≪ЦНИИТ≫ выражают соболезнование семье и близким В.П. Филиппова.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ: 
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА:

Некролог

ДЛЯ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ: