Подписаться на журнал
Подать статью

Выпуск журнала "Вестник ЦНИИТ"
Номер 1 (выпуск 14) за 2021 год

ВЕСТНИК ЦНИИТ №1 (14) 2021

Информация о журнале: Читать
Главный редактор: А. Эргешов
Год основания: 2017
ISSN (Print): Просмотреть
Сайт издательства: http://critub.ru
http://tb-bulletin.ru

Вернуться в архив

Содержание

1)

ОСОБЕННОСТИ ОБМЕНА ЖЕЛЕЗА У БОЛЬНЫХ ТУБЕРКУЛЕЗОМ И ПРИ ЕГО СОЧЕТАНИИ С ВИЧ-ИНФЕКЦИЕЙ И САХАРНЫМ ДИАБЕТОМ

Абдуллаев Р.Ю., Комиссарова О.Г., Терентьева О.Р.

5 ОПИСАНИЕ
2)

ОСОБЕННОСТИ ТЕЧЕНИЯ И ИСХОДОВ БЕРЕМЕННОСТИ У ЖЕНЩИН С ТУБЕРКУЛЕЗОМ

Бородулина Е.А., Кузьмина А.И.

15 ОПИСАНИЕ
3)

ВЛИЯНИЕ ЭКСТРАКТА ЛУКА ОШАНИНА (ГОРНЫЙ ТАДЖИКИСТАН) НА ТЕЧЕНИЕ ТУБЕРКУЛЕЗНОЙ ИНФЕКЦИИ В ЭКСПЕРИМЕНТЕ У ИНБРЕДНЫХ МЫШЕЙ

Мирзоева Ф.Д., Авербах М.М., Стержанова Н.В., Саторов С.С., Никоненко Б.В.

21 ОПИСАНИЕ
4)

КОМОРБИДНОСТЬ НОВОЙ КОРОНАВИРУСНОЙ ИНФЕКЦИИ (COVID-19), ТУБЕРКУЛЕЗА И ВИЧ-ИНФЕКЦИИ С ИММУНОДЕФИЦИТОМ

Мишина А.В., Мишин В.Ю., Собкин А.Л., Сергеева Н.В., Осадчая О.А., Пилипенко С.В., Епишин И.А.

28 ОПИСАНИЕ
5)

МИКОБАКТЕРИОЗЫ ОРГАНОВ ДЫХАНИЯ В МЕГАПОЛИСЕ: ЛЕЧЕНИЕ И ЕГО ЭФФЕКТИВНОСТЬ, НАБЛЮДЕНИЕ БОЛЬНЫХ

Гунтупова Л.Д., Борисов С.Е.

38 ОПИСАНИЕ
6)

СРАВНЕНИЕ ДИНАМИКИ РЕНТГЕНОЛОГИЧЕСКИХ ОСОБЕННОСТЕЙ ИНФИЛЬТРАТИВНОГО И ДИССЕМИНИРОВАННОГО ТУБЕРКУЛЕЗА ЛЕГКИХ ПО ДАННЫМ КТ ДИАГНОСТИКИ И ОБЗОРНОЙ РЕНТГЕНОГРАФИИ ОРГАНОВ ГРУДНОЙ КЛЕТКИ

Яцукова А.В., Бабаева И.Ю., Шаполовский В.С., Шаполовская А.С., Яцуков А.В., Жукова Д.Ю.

50 ОПИСАНИЕ
7)

ХИМИОТЕРАПИЯ ТУБЕРКУЛЕЗА ОРГАНОВ ДЫХАНИЯ С ЛЕКАРСТВЕННОЙ УСТОЙЧИВОСТЬЮ МБТ У ДЕТЕЙ СТАРШЕГО ВОЗРАСТА И ПОДРОСТКОВ: НОВЫЕ ВЫЗОВЫ – НОВЫЕ РЕШЕНИЯ

Панова Л.В., Овсянкина Е.С.

58 ОПИСАНИЕ
8)

ВОЗМОЖНОСТИ КАРДИОПРОТЕКТИВНОЙ ТЕРАПИИ: В ФОКУСЕ ПАЦИЕНТЫ С ТУБЕРКУЛЕЗОМ И ХРОНИЧЕСКОЙ ОБСТРУКТИВНОЙ БОЛЕЗНЬЮ ЛЕГКИХ

Багишева Н.В., Мордык А.В., Моисеева М.В., Нестерова К.И., Небесная Е.Ю., Филипенко Г.В., Ароян А.Р., Батищева Т.Л., Андреева И.А.

65 ОПИСАНИЕ
9)

ЭФФЕКТИВНОСТЬ И РЕНТАБЕЛЬНОСТЬ МАССОВОГО ПРОФИЛАКТИЧЕСКОГО ФЛЮОРОГРАФИЧЕСКОГО ОБСЛЕДОВАНИЯ НАСЕЛЕНИЯ НА ПРИМЕРЕ РЕСПУБЛИКИ САХА (ЯКУТИЯ)

Кравченко А.Ф., Шепелева Л.П.

76 ОПИСАНИЕ
10)

МЕТОДЫ ИДЕНТИФИКАЦИИ МИКОБАКТЕРИЙ

Ларионова Е.Е., Андреевская С.Н., Смирнова Т.Г., Севастьянова Э.В., Черноусова Л.Н.

87 ОПИСАНИЕ
11)К 70-летию со дня рождения Александра Соломоновича Апта99 ОПИСАНИЕ

ОСОБЕННОСТИ ОБМЕНА ЖЕЛЕЗА У БОЛЬНЫХ ТУБЕРКУЛЕЗОМ И ПРИ ЕГО СОЧЕТАНИИС ВИЧ-ИНФЕКЦИЕЙ И САХАРНЫМ ДИАБЕТОМ

Статья 1.Страница 5.
НАЗВАНИЕ СТАТЬИ:

ОСОБЕННОСТИ ОБМЕНА ЖЕЛЕЗА У БОЛЬНЫХ ТУБЕРКУЛЕЗОМ И ПРИ ЕГО СОЧЕТАНИИС ВИЧ-ИНФЕКЦИЕЙ И САХАРНЫМ ДИАБЕТОМ

DOI: 10.7868/S2587667821010015

АВТОРЫ:

Абдуллаев Р.Ю.1, Комиссарова О.Г.1, 2, Терентьева О.Р.1

1 ФГБНУ «Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза», г. Москва, Россия

2 ФГАОУ ВО «Российский национальный исследовательский медицинский университет им. Н.И. Пирогова», г. Москва, Россия

ОПИСАНИЕ:

Поступила 15.04.2020

В обзоре приведены литературные данные об особенностях обмена железа у больных туберкулезом (ТБ) легких, ТБ, сочетанным с ВИЧ-инфекцией и ТБ, сочетанным с сахарным диабетом (СД). Снижение циркулирующего железа у больных ТБ, в том числе сочетанным с ВИЧ-инфекцией, а также с СД, часто является компонентом системного воспалительного ответа, относится к механизмам врожденного иммунитета, ограничивающим в организме размно­жение инфекционного возбудителя. Вместе с тем к снижению уровня циркулирующего железа может приводить и его истинный дефицит.

Статья подготовлена в ходе выполнения научно-исследовательской работы по теме НИР № 0515-2015-0020 «Совре­менные подходы к диагностике, эпидемиологии и лечению лекарственно-устойчивого туберкулеза органов дыхания, в том числе при его сочетании с ВИЧ-инфекцией и сахарным диабетом».

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ:
  1. Дворецкий Л.И. Алгоритмы диагностики и лече­ния железодефицитной анемии // Русский мед. журнал. 2002. – Т. 10. – № 17. – С. 743–750.
  2. Долгов В.В., Луговская С.А., Почтарь М.Е. Лабора­торная диагностика нарушений обмена железа. СПб.: Витал Диагностикс СПб. – 2002. – 52 с.
  3. Инякова Н.В., Демихов В.Г., Журина О.Н. Анемия при туберкулезной инфекции // Вестник после­дипломного медицинского образования. 2015. – № 3. – С. 74–81.
  4. Каминская Г.О., Абдуллаев Р.Ю., Батурова Г.А., Ко­миссарова О.Г. Особенности обеспеченности ор­ганизма железом у больных туберкулезом легких на фоне лечения // Туберкулез и болезни легких. 2009. – T. 86. – № 7. – С. 46–55.
  5. Каминская Г.О., Абдуллаев Р.Ю., Комиссарова О.Г. Место растворимых рецепторов трансферрина в выявлении природы железодефицитных состо­яний у больных туберкулезом легких // Туберкулез и болезни легких. – T. 90. – № 8. – С. 21–27.
  6. Лукина Е.А., Деженкова А.В. Метаболизм железа в норме и при патологии // Клиническая онкогема­тология. 2015. – Т. 8. – № 4. – С. 355–361.
  7. Погорелов В.М., Козинец Г.И., Ковалева Л.Г. Ла­бораторно-клиническая диагностика анемии. М.: Медицинское информационное агентство. – 2004. – 73 с.
  8. Al-Omar I.A., Oluboyede A.O. Serum ferritin and oth­er iron parameters in patients with pulmonary tuber­culosis. Saudi Med. J., 2002, vol. 23, pp. 244–246.
  9. Andrew K.D., Wood R., Vogt M., Lawn S.D. Predictive value of anemia for tuberculosis in HIV-infected pa­tients in sub-Saharan Africa: an indication for routine microbiological investigation using new rapid assays. Acquir. Immune Defic. Syndr., 2014, vol. 66, pp. 33–40.
  10. de Benoist B., McLean Erin., Egli I., Cogswell M. Worldwide prevalence of anemia 1993–2005. WHO Global Database on Anaemia. Geneva, World Health Organization, 2008, 51 p.
  11. Blackwell J.M., Goswami T., Evans C.A., Sibthor­pe D., Papo N., White J.K., Searle S., Miller E.N., Pea­cock C.S., Mohammed H., Ibrahim M. SLC11A1 (for­merly NRAMP1) and disease resistance. Cell Microbiol., 2001, vol. 3, pp. 773–784.
  12. Boelaert J.R., Vandecasteele S.J., Appelbera R., Gor­deuk V.R. The effect of the host’s iron status on tuberculosis. Infect. Dis., 2007, vol. 195, no. 12, pp.1745–1753.
  13. O’Brien M.E., Kupka R., Msamanga G.I., Saathoff E., Hunter D.J., Fawzi W.W. Anemia is an independent predictor of mortality and immunologic progression of disease among women with HIV in Tanzania. Ac­quir. Immune. Defic. Syndr., 2005, vol. 40, pp. 219– 225.
  14. Buskin S.E., Sullivan P.S. Anemia and its treatment and outcomes in persons infected with human im­munodeficiency virus. Transfusion, 2004, vol. 44, pp. 826–832.
  15. Cellier M.F., Courville P., Campion C. Nramp1 phagocyte intracellular metal withdrawal defense. Infect., 2007, vol. 9, pp.1662–1670.
  16. Das B.S., Devi U., Mohan Rao C., Srivastava V.K., Rath P.K., Das B.S. Effect of iron supplementation on mild to moderate anemia in pulmonary tuberculosis. J. Nutr., 2003, vol. 90, pp. 541–550.
  17. Devi U., Rao C.M., Srivastava V.K., Rath P.K., Das B.S. Effect of iron supplementation on mild to moderate anemia in pulmonary tuberculosis. J. Nutr., 2003, vol. 90, pp. 541–550.
  18. Ekiz C., Agaoglu L., Karakas Z., Gurel N., Yalcin I. The effect of iron deficiency anemia on the func­tion of the immune system. J., 2005, vol. 5, pp. 579–583.
  19. Forbes J.R., Gros P. Divalent-metal transport by NRAMP proteins at the interface of host-pathogen interactions. Trends Microbiol. 2001, vol. 9, pp. 397– 403.
  20. Friis H., Gomo E., Nyazema N., Ndhlovu P., Krarup H., Madsen P.H., Michaelsen K.F. Iron, haptoglobin phe­notype, and HIV‑1 viral load: a cross-sectional study among pregnant Zimbabwean women. Acquir. Im­mune Defic. Syndr., 2003, vol. 33, pp. 74–81.
  21. Gangaidzo I.T., Moyo V.M., Mvundura E., Aggrey G., Murphree N.L., Khumalo H., Saungweme T., Kas­vosve I., Gomo Z.A., Rouault T., Boelaert J.R., Gor­deuk V.R. Association of pulmonary tuberculosis with increased dietary iron. Infect. Dis., 2001, vol. 184, pp. 936–939.
  22. Girelli D., Nemeth E., Swinkels D.W. Hepcidin in the diagnosis of iron disorders. Blood, 2016, vol. 127, pp. 2809–2814.
  23. Gomes M.S., Boelaert J.R., Appelberg R. Role of iron in experimental Mycobacterium avium infection. Clin. Virol., 2001, vol. 20, no. 3, pp.117–122.
  24. Gordeuk V.R., Onojobi G., Schneider M.F., Dawkins F.W., Delapenha R., Voloshin Y., Bacon M., Minkoff H., Levine A., Cohen M., Greenblatt R.M. The as­sociation of serum ferritin and transferrin receptor concentrations with mortality in women with human immunodeficiency virus infection. Haematologica, 2006, vol. 91, pp. 739–743.
  25. Gordeuk V.R., Moyo V.M., Nouraie M., Gangaidzo I.T., Murphree N.L., Gomo Z.A.R., Boelaert R., Weiss G. Circulating cytokines in pulmonary tuberculosis ac­cording to HIV status and dietary iron content. J. Tuberc. Lung Dis., 2009, vol. 13, no. 10, pp. 1267– 1273.
  26. Hella J., Cercamondi C.I., Mhimbira F., Sasamalo M., Stoffel N., Zwahlen M., Bodmer Th., Gagneux S., Rei­ther K., Zimmermann M., Risch L., Fenner L. Anemia in tuberculosis cases and household controls from Tanzania: Contribution of disease, coinfections, and the role of hepcidin. PLoS ONE, 2018, vol. 13, no. 4, pp. e0195985.
  27. Isanaka S., Aboud S., Mugusi F., Bosch R.J., Wil­lett W.C., Spiegelman D., Duggan C., Fawzi W.W. Iron status predicts treatment failure and mortality in tuberculosis patients: A prospective cohort study from Dar es Salaam, Tanzania. PLoS ONE, 2012, vol. 7, no. 5, pp. e37350.
  28. Isanaka S., Mugusi F., Urassa W., Willett W.C., Bosch R.J., Villamor E., Spiegelman D., Duggan C., Fawzi W.W. Iron deficiency and anemia predict mor­tality in patients with tuberculosis. Nutrition, 2012, vol. 142, pp. 350–357.
  29. Johannessen A., Naman E., Ngowi B.J., Sandvik L., Matee M.I., Aglen H.E., Gundersen S.G., Bruun J.N. Predictors of mortality in HIV-infected patients start­ing antiretroviral therapy in a rural hospital in Tanza­nia. BMC Infect. Dis., 2008, vol. 8, no. 52, pp. 1–10.
  30. Johansson K.A., Robberstad B., Norheim O.F. Fur­ther benefits by early start of HIV treatment in low income countries: survival estimates of early versus deferred antiretroviral therapy. AIDS Res. Ther., 2010, vol. 7, no. 3, pp. 2–9.
  31. Johnsona E.E., Wessling-ResnickbIron M. Metabo­lism and the innate immune response to infection. Microbes Infect., 2012, vol. 14, no. 3, pp. 207–216.
  32. Kassu A., Yabutani T., Mahmud Z.H., Mohammad A., Nguyen N., Huong B.T., Hailemariam G., Diro E., Ayele B., Wondmikun Y., Motonaka J., Ota F. Altera­tion in serum levels of trace elements in tuberculosis and HIV-infections. J. Clin. Nutr., 2006, vol. 60, pp. 580–586.
  33. Kerkhoff A.D., Meintjes G., Opie J., Vogt M., Jhil­meet N., Wood R., Lawn S.D. Anaemia in patients with HIV-associated TB: relative contributions of anaemia of chronic disease and iron deficiency. J. Tuberc. Lung Dis., 2016, vol. 20, pp. 193–201.
  34. Kumar N.P., Banurekha V.V., Nair D., Dolla Ch., Ku­maran P., Babu S. Modulation of iron status biomarkers in tuberculosis-diabetes co-morbidity. Tuberculosis (Edinb), 2018, vol. 108, pp. 127–135.
  35. Lee S.W., Kang Y.A., Yoon Y.S., Um S.W., Lee S.M., Yoo C.G., Kim Y.W., Han S.K., Shim Y.S., Yim J.J. The prevalence and evolution of anemia associated with tuberculosis. Korean Med. Sci., 2006, vol. 21, pp. 1028–1032.
  36. van Lettow M., West C.E., van der Meer J.W., Wieringa F.T., Semba R.D. Low plasma selenium con­centrations, high plasma human immunodeficien­cy virus load and high interleukin‑6 concentrations are risk factors associated with anemia in adults presenting with pulmonary tuberculosis in Zomba district, Malawi. J. Clin. Nutr., 2005, vol. 59, pp. 526–532.
  37. Lounis N., Truffot-Pernot C., Grosset J., Gordeuk V.R., Boelaert J.R. Iron and Mycobacterium tuberculosis in­fection. Clin. Virol., 2001, vol. 20, no. 3, pp. 123–126.
  38. Lundgren J.D., Mocroft A. Anemia and survival in hu­man immunodeficiency virus. Infect. Dis., 2003, vol. 37 (Suppl. 4), pp. S297-S303.
  39. McDermid J.M., Jaye A., Schim van der Loeff M.F., Todd J., Bates C., Austin S., Jeffries D., Awasana A.A., Whittlex A.A., Prentice A. Elevated iron status strong­ly predicts mortality in West African adults with HIV infection. Acquir. Immune. Defic. Syndr., 2007, vol. 46, pp. 498–507.
  40. Minchella P.A., Donkor S., McDermid J.M., Suther­land J.S. Complex anemia in tuberculosis: the need to consider causes and timing when designing interven­tions. Infect. Dis., 2015, vol. 60, pp. 764–772.
  41. de Monye C., Karcher D.S., Boelaert J.R., Gordeuk V.R. Bone marrow macrophage iron grade and survival of HIV-seropositive patients. AIDS, 1999, vol. 13, pp. 375–380.
  42. Moore R.D., Forney D. Anemia in HIV-infected patients receiving highly active antiretroviral therapy. Acquir. Immune Defic. Syndr., 2002, vol. 29, pp. 54–57.
  43. Nemeth E., Rivera S., Gabayan V., Keller C., Taudorf S., Pedersen B.K., Ganz T. IL‑6 mediates hypo­ferremia of inflammation by inducing the synthesis of the iron regulatory hormone hepcidin. Clin. Invest., 2004, vol. 113, pp. 1271–1276.
  44. Nemeth E., Tuttle M.S., Powelson J., Vaughn M.B., Donovan A., Ward D.M., Ganz T., Kaplan J. Hepci­din regulates cellular iron efflux by binding to ferro­portin and inducing its internalization. Science, 2004, vol. 306, pp. 2090–2093.
  45. Oppenheimer S.J. Iron and its relation to immuni­ty and infectious disease. Nutr., 2001, vol. 131, pp. S616-S633.
  46. Petraro P., Duggan C., Spiegelman D., Hertzmark E., Makubi A., Chalamilla G., Siril H., Sando D., Aboud S., Fawzi W.W. Determinants of anemia among human im­munodeficiency virus-positive adults at care and treat­ment clinics in Dar es Salaam, Tanzania. J. Trop. Med. Hyg., 2016, vol. 94, no. 2, pp. 384–392.
  47. Pietrangelo A., Trautwein C. Mechanisms of disease: the role of hepcidin in iron homeostasis – implica­tions for hemochromatosis and other disorders. Clin. Pract. Gastroenterol. Hepatol., 2004, vol. 1, no. 1, pp. 39–45.
  48. Popa E.C., Cernat R.C. Iron status in pulmonary tu­berculosis. Respir. J., 2005, vol. 26, (Suppl. 49), pp. S427.
  49. Ratledge C. Iron, mycobacteria and tuberculosis. Tu­berculosis (Edinb), 2004, vol. 84, pp. 110–130.
  50. Schaible U.E., Collins H.L., Priem F., Kaufmann S.H. Correction of the iron overload defect in beta‑2-mi­croglobulin knockout mice by lactoferrin abolishes their increased susceptibility to tuberculosis. Exp. Med., 2002, vol. 196, pp. 1507–1513.
  51. Semba R.D., Shah N., Klein R.S., Mayer K.H., Schuman P., Vlahov D. Prevalence and cumulative inci­dence of and risk factors for anemia in a multicenter cohort study of human immunodeficiency virus-infect­ed and -uninfected women. Dial. Transplant., 2002, vol. 34, pр. 260–266.
  52. Smith R.E. Jr. The clinical and economic burden of anemia. J. Manag. Care, 2010, vol. 16 (Suppl. 1), pp. S59–S66.
  53. Taha D.A., Thanoon Imad A-J. Antioxidant Status, C-reactive protein and iron status in patients with pulmonary tuberculosis. SQU Med. J., 2010, vol. 10, pp. 361–369.
  54. Wessels G., Schaaf H.S., Beyers N., Gie R.P., Nel E., Donald P.R. Haematological abnormalities in children with tuberculosis. Trop. Pediatr., 1999, vol. 45, pp. 307–310.
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА:

туберкулез, ВИЧ-инфекция, сахарный диабет, обмен железа.

ДЛЯ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ:

ФГБНУ «Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза»

107564, г. Москва, Яузская аллея, д. 2

Абдуллаев Ризван Юсиф Оглы – д.м.н., профессор, зав. отделом патанатомии, электронной микроскопии и биохимии, зав. лабораторией биохимии

Тел.: +7 (499) 785-90-71

E-mail: rizvan0403@yandex.ru

Комиссарова Оксана Геннадьевна – д.м.н., заместитель директора по научной и лечебной работе ФГБНУ «ЦНИИТ», профессор кафедры фтизиатрии лечебного факультета Российского национального исследовательского медицинского университета им. Н.И. Пирогова

Тел.: +7 (903) 118-48-18

E-mail: oksana.komissarova.72@mail.ru

Терентьева Ольга Романовна – заочный аспирант

Тел.: +7 (499) 785–90–71

E-mail: terentevaor@mail.ru

ОСОБЕННОСТИ ТЕЧЕНИЯ И ИСХОДОВ БЕРЕМЕННОСТИ У ЖЕНЩИН С ТУБЕРКУЛЕЗОМ

Статья 2.Страница 15.
НАЗВАНИЕ СТАТЬИ:

ОСОБЕННОСТИ ТЕЧЕНИЯ И ИСХОДОВ БЕРЕМЕННОСТИ У ЖЕНЩИН С ТУБЕРКУЛЕЗОМ

DOI: 10.7868/S2587667821010027

АВТОРЫ:

Бородулина Е.А., Кузьмина А.И.

ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Минздрава России, г. Самара, Россия

ОПИСАНИЕ:

Поступила 06.09.2020

Обзор посвящен наиболее актуальным вопросам эпидемиологии, диагностики и лечения туберкулеза (ТБ) на фоне беременности. Внедрение новых методов ранней диагностики ТБ, разработка регламентирующих документов и про­граммы по снижению заболеваемости ТБ у беременных являются неизменно актуальными.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ:
  1. Бородулина Е.А. Скрининг туберкулезной инфек­ции. Современные рекомендации // Аллергология и иммунология в педиатрии. 2017. – Т. 49. – № 2. – С. 29–33.
  2. Бородулина Е.А., Бородулина Э.В., Гладунова Е.П., Вдоушкина Е.С. Медико-социальная характеристи­ка впервые выявленных пациентов с туберкуле­зом // Медицинский альянс. – № 3. – С. 41–46.
  3. Васильева И.А., Покровский В.В., Аксенова В.И. и др. Федеральные клинические рекомендации по диагностике и лечению туберкулеза у больных ВИЧ-ин- фекцией. Тверь: Триада. – 2014. – 56 с.
  4. Гопоняко С.В., Буйневич И.В., Бутько С.В., Бонда­ренко В.Н. Эпидемиология впервые выявленного туберкулеза легких у женщин репродуктивного возраста // Проблемы здоровья и экологии. 2017. – Т. 53. – № 3. – С. 79–83.
  5. Еременко Е.П., Бородулина Е.А., Сергеева И.А., Куд­лай Д.А., Бородулин Б.Е. Рекомбинантный in vitro тест T-SPOT.TB как метод скрининга для ранней ди­агностики туберкулезной инфекции // Туберкулез и болезни легких. 2020. – Т. 98. – № 4. – С. 48–52.
  6. Зимина В.Н., Савицкая Н.Г., Шешелякина Н.Н. Те­чение беременности, родов и перинатальные ис­ходы у женщин с ВИЧ-инфекцией и активным ту­беркулезом // Проблемы туберкулеза и болезней легких. 2014. – Т. 91. – № 9. – С. 21–22.
  7. Корнева Н.В., Старшинова А.А., Ананьев С.М., Овчинникова Ю.Э., Довгалюк И.Ф. Прогностиче­ские факторы развития туберкулеза у детей с ла­тентной туберкулезной инфекцией // Туберкулез и болезни легких. 2016. – Т. 94. – № 6. – С. 14–19, DOI: 10.21292/2075‑1230‑2016‑94‑6‑14‑19
  8. Кравченко Е.Н., Мордык А.В., Валеева Г.А. и др. Благополучное материнство у женщин с туберку­лезом: миф или реальность // Врач. 2015. – Т. 1. – С. 5–8.
  9. Кульчавеня Е.В., Рейхруд Т.А. Туберкулез и бере­менность // Медицина и образование в Сибири. – № 6. – С. 1–6.
  10. Мордык А.В., Кравченко Е.Н., Валеева Г.А., Пузы­рева Л.В. Сравнительный анализ особенностей те­чения беременности у здоровых и больных тубер­кулезом легких женщин // Сибирский медицинский журнал. 2014. – Т. 125. – № 2. – С. 26–31.
  11. Мордык А.В., Пузырева Л.В., Валеева Г.А. Взаи­мовлияние туберкулеза и беременности: есть ли возможность преодолеть негативные тенденции // Медицинский альманах. – T. 39. – № 4. – С. 72–75.
  12. Нечаева О.Б. Эпидемическая ситуация по туберку­лезу в Российской Федерации // Заместитель глав­ного врача. 2015. – № 7. – С. 17–23.
  13. Общероссийская общественная организация «Российское общество фтизиатров». Федераль­ные клинические рекомендации по профилакти­ке, диагностике и лечению туберкулеза у боль­ных ВИЧ-инфекцией. http://roftb.ru/netcat_files/ doks2016/rec2016.pdf
  14. Павлова М.В., Сапожникова Н.В., Арчакова Л.И., Гаврилов П.В., Старшинова А.А., Зильбер Э.К. Осо­бенности течения и эффективность терапии ту­беркулеза легких у беременной женщины // Ту­беркулез и болезни легких. 2014. – № 3. – С. 67–71, DOI: 10.21292/2075‑1230‑2014‑0‑3‑105‑106
  15. Пузырева Л.В., Мордык А.В., Валеева Г.А. Влияние туберкулеза на течение беременности и развитие плода // Земский врач. – Т. 29–30. – № 1–2. – С. 22–26.
  16. Савельева Г.М., ред. Акушерство: националь­ное руководство., 2-е изд., перераб. и доп. – М.: ГЭОТАР-Медиа. – 2019. – 1080 с.
  17. Старшинова А.А., Кудлай Д.А., Довгалюк И.Ф., Басанцова Н.Ю., Зинченко Ю.С., Яблонский П.К. Эффективность применения новых методов имму­нодиагностики туберкулезной инфекции в Россий­ской Федерации // Педиатрия. Журнал им. Г.Н. Спе­ранского. 2019. – Т. 98. – № 4. – С. 229–235.
  18. Яблонский П.К. Фтизиатрия. Национальные кли­нические рекомендации. – М.: ГЭОТАР-Медиа. – 2016. – 240 с.
  19. Centers for Disease Control and Prevention. Provi­sional CDC Guidelines for the use and safety moni­toring of bedaquiline fumarate (Sirturo) for the treat­ment of multidrug-resistant tuberculosis. MMWR Recomm. 2016, no. 62, pp. 1–12.
  20. Dennis E.M., Hao Y., Tamambang M. et al. Tuberculo­sis during pregnancy in the United States: Racial/eth­nic disparities in pregnancy complications and in-hos­pital death. PloS Оne, 2018, vol. 13, no. 3, pp. 1–11. DOI: 10.1371/journal.pone.0194836
  21. Jana N., Barik S., Arora N. Maternal and perinatal outcomes of tuberculosis during pregnancy and the postpartum period: a systematic review and meta-analysis: Maternal tuberculosis and undernutrition – an ominous combination for adverse maternal and perinatal outcomes. BJOG, 2017, vol. 124, no. 13, pp. 2018–2019. DOI: 10.1111/1471-0528.14804
  22. Jaspard M., Elefant-Amoura E., Melonio I. et al. Be­daquiline and linezolid for extensively drug-resis­tant tuberculosis in pregnant woman. Infect. Dis., 2017, vol. 23, no. 10, pp. 39–51. DOI: 10.3201/ eid2310.161398
  23. Khan M., Pillay T., Mudley J. et al. Pregnancy com­plicated by drug-resistant tuberculosis and HIV in Durban, South Africa. Infect. Dis., 2017, no. 75, pp. 1264–1269.
  24. Kodadhala V., Gudeta A., Zerihun A. et al. Postpar­tum tuberculosis: A diagnostic and therapeutic chal­lenge. Case Rep. Pulmonol., 2016, no. 6, pp. 1–6. DOI: 10.1155/2016/3793941
  25. McKenna L., Frick M., Lee C. et al. A community per­spective on the inclusion of pregnant women in tu­berculosis drug trials. Infect. Dis., 2017, vol. 65, no. 8, pp. 1383–1387. DOI: 10.1093/cid/cix533
  26. Onyambu C.K., Tharamba N.M. Screening for con­genital fetal anomalies in low risk pregnancy: the Kenyatta National Hospital experience. BMC Preg­nancy Childbirth, 2018, vol. 180, no. 18, pp. 1–9. DOI: 10.1186/s12884–018–1824-z
  27. Padmapriyadarsini C., Shri Vijay S., BalaYogendra et al. Multidrug resistant tuberculosis during preg­nancy. Indian J. Tuberc., 2017, vol. 64, no. 1, pp. 63–64. DOI: 10.1016/j.ijtb.2016.09.018
  28. Raznatovska O.M., Shalmin O.S. Peculiarities of the course of pregnancy in women with chemoresis­tant tuberculosis (literature review). Zaporizhzhya medical journal, 2019, vol. 21, no. 5, pp. 691–696. DOI: 10.14739/2310–1210.2019.5.179473
  29. Schnippel K., Ndjeka N., Conradie F. et al. A call to action: Addressing the reproductive health needs of women with drug-resistant tuberculosis. Afr. Med. J., 2016, vol. 106, no. 4, pp. 30–31. DOI: 10.7196/SAMJ. 2016.v106i4.10205
  30. Shovkun L.A., Aksenova V.A., Kudlai D.A., Sary­chev A.M. The role of immunological tests in the di agnosis of tuberculosis infection in children with ju­venile idiopathic arthritis (JIA). European Respiratory Journal, Supplement, 2018, vol. 62, no. 52, pp. 60–64. DOI: https://doi.org/10.1183/13993003.congress‑2018. PA2733
  31. Sobhy S., Babiker O., Kunst H. Authors’reply: Effec­tive strategies to improve maternal and perinatal outcomes for pregnant women with tuberculosis, especially those living in poverty, are urgently need­ed. BJOG Exchange, 2017, vol. 124, no. 13, p. 2019. DOI: 10.1111/1471–0528.14803
  32. World Health Organization. Global tuberculosis re­port 2017. Geneva, WHO, 2017.
  33. World Health Organization. Global tuberculosis re­port 2019. Geneva, WHO, 2019.
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА:

туберкулез, беременность, исходы беременности диагностика, лечение.

ДЛЯ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ:

ФГБОУ ВО «Самарский государственный медицинский университет» Минздрава России

443099, г. Самара, Чапаевская ул., д. 89

Бородулина Елена Александровна – д.м.н., профессор, зав. кафедрой фтизиатрии и пульмонологии

Тел.: +7 (846) 332‑57‑35

E-mail: borodulinbe@yandex.ru

Кузьмина Алина Игоревна – студентка 5-го курса лечебного факультета

Тел.: +7 (846) 332‑57‑35

E-mail: alina.cuzmina555@mail.ru

ВЛИЯНИЕ ЭКСТРАКТА ЛУКА ОШАНИНА (ГОРНЫЙ ТАДЖИКИСТАН) НА ТЕЧЕНИЕ ТУБЕРКУЛЕЗНОЙ ИНФЕКЦИИ В ЭКСПЕРИМЕНТЕ У ИНБРЕДНЫХ МЫШЕЙ

Статья 3.Страница 21.
НАЗВАНИЕ СТАТЬИ:

ВЛИЯНИЕ ЭКСТРАКТА ЛУКА ОШАНИНА (ГОРНЫЙ ТАДЖИКИСТАН) НА ТЕЧЕНИЕ ТУБЕРКУЛЕЗНОЙ ИНФЕКЦИИ В ЭКСПЕРИМЕНТЕ У ИНБРЕДНЫХ МЫШЕЙ

DOI: 10.7868/S2587667821010039

АВТОРЫ:

Мирзоева Ф.Д.1, Авербах М.М.2, Стержанова Н.В.2, Саторов С.С.1, Никоненко Б.В.2

1 Таджикский государственный медицинский университет им. Абуали ибни Сино, г. Душанбе, Р. Таджикистан

2 ФГБНУ «Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза», г. Москва, Россия

ОПИСАНИЕ:

Поступила 14.09.2020

В эксперименте исследовали влияние спиртового экстракта лука Ошанина, произрастающего в Таджикистане, на течение туберкулезной инфекции в сочетании с изониазидом. Мышей инбредной линии BALB/c, зараженных M. tuberculosis H37Rv, лечили изониазидом в сочетании с экстрактом лука Ошанина. В результате продемонстриро­вано, что по таким показателям, как масса селезенки, количество колониеобразующих единиц (КОЕ) микобактерий туберкулеза (МБТ) в легких и легочная патология, комбинация изониазида с экстрактом лука Ошанина более эффек­тивна, чем экстракт лука или изониазид по отдельности.

Работа подготовлена в рамках темы НИР № 0515-2019-0018 «Изучение механизмов врожденного и адаптивного звеньев иммунного ответа при туберкулезе и интерстициальных заболеваниях легких».

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ:
  1. Anywar G., Kakudidi E., Byamukama R.J., Mukon­zo R.J., Schubert A., Oryem-Origa H. Indigenous tradi­tional knowledge of medicinal plants used by herbal­ists in treating opportunistic infections among people living with HIV/AIDS in Uganda. Ethnopharm., 2020, vol. 246, no. 10, p. 112205. DOI: doi.org/10.1016/j. jep.2019.112205
  2. Bakal S.N., Bereswill S., Heimesaat M.M. Finding novel antibiotic substances from medicinal plants – Antimicrobial properties of Nigella sativa directed against multidrug resistant bacteria. J. Microbiol. and Immunol., 2017, vol. 7, no. 1, pp. 92–98.
  3. Hossan M.S., Jindal H., Maisha S., Samudi Raju C., Devi Sekaran S., Nissapatorn V., Kaharudin F., Su Yi L., Khoo T.J., Rahmatullah M., Wiart C. Antibacteri­al effects of 18 medicinal plants used by the Khyang tribe in Bangladesh. Pharm Biol., 2018, vol. 56, no. 1, pp. 201–208. DOI: 10.1080/13880209.2018.1446030
  4. Nikonenko B.V., Samala R., Einck L., Nacy C.A. Rapid, simple in vivo screen for new drugs active against Mycobacterium tuberculosis. Agents Chemother., 2004, vol. 48, no. 12, pp. 4550–4555. DOI: 10.1128/AAC.48.12.4550–4555.2004
  5. Nuermberger E.L., Yoshimatsu T., Tyagi S., Williams K., Rosenthal I., O’Brien R.J., Vernon A.A., Chaisson R.E., Bishai and Grosset W.R. Moxifloxacin-containing regi­mens of reduced duration produce a stable cure in murine tuberculosis. J. Respir. Crit. Care Med., 2004, vol. 170, pp. 1131–1134. DOI: doi.org/10.1164/ rccm.200407-885OC
  6. Perlin D.S. Mechanisms of echinocandin antifungal drug resistance. NY Acad. Sci., 2015, vol. 1354, no. 1, pp. 1–11. DOI: doi.org/10.1111/nyas.12831
  7. Peterson E., Kaur P. Antibiotic resistance mecha­nisms in bacteria: relationships between resistance determinants of antibiotic producers, environmen­tal bacteria, and clinical pathogens. Frontiers in Mi­crobiology, 2018, vol. 9, Article 2928. DOI: 10.3389/ fmicb.2018.02928
  8. Pinkie C., Sheela D. Antimicrobial activity of Ama­ranth Alkaloid against pathogenic microbes. J. Herbal Medicine, 2016, vol. 4, no. 5, pp. 70–72.
  9. Pradipta I.S., Forsman L.D., Bruchfeld J., Hak E., Alffenaar J.W. Risk factors of multidrug-resistant tuber­culosis: A global systematic review and meta-analysis. J. Infect., 2018, vol. 77, no. 6, pp. 469–478. DOI: doi.org/10.1016/j.jinf.2018.10.004
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА:

туберкулез, Mycobacterium tuberculosis, лечение, инбредные мыши, экстракт лука.

ДЛЯ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ:

Таджикский государственный медицинский университет им. Абуали ибни Сино

734000, Р. Таджикистан, г. Душанбе, пр. Рудаки, д. 139

Мирзоева Фазила Давлаталиевна – ассистент кафедры микробиологии, иммунологии и вирусологии

Тел.: (+992) 37‑224‑36‑87

Е-mail: fazila.mirzoeva88@mail.ru

Саторов Саидбек Саторович – д.м.н., профессор, зав. кафедрой микробиологии, иммунологии и вирусологии

Тел.: (+992) 37‑224‑36‑87

Е-mail: somona@tajmedun.tj

ФГБНУ «Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза»

107564, г. Москва, Яузская аллея, д. 2

Стержанова Наталья Валерьевна – аспирант отдела иммунологии, лаборатория иммуногенетики

Тел.: +7 (965)148‑20‑32

Е-mail: sterghanova@gmail.com

Никоненко Борис Владимирович – д.м.н., ведущий научный сотрудник отдела иммунологии, лаборатория иммуногенетики

Тел.: +7(499) 785‑90‑72

Е-mail: boris.nikonenko52@gmail.com

Авербах Михаил Михайлович – д.м.н., главный научный сотрудник отдела иммунологии

Тел.: +7 (916) 062‑30‑36

Е-mail: amm50@mail.ru

КОМОРБИДНОСТЬ НОВОЙ КОРОНАВИРУСНОЙИНФЕКЦИИ (COVID‑19), ТУБЕРКУЛЕЗАИ ВИЧ—ИНФЕКЦИИ С ИММУНОДЕФИЦИТОМ

Статья 4.Страница 28.
НАЗВАНИЕ СТАТЬИ:

КОМОРБИДНОСТЬ НОВОЙ КОРОНАВИРУСНОЙИНФЕКЦИИ (COVID‑19), ТУБЕРКУЛЕЗАИ ВИЧ-ИНФЕКЦИИ С ИММУНОДЕФИЦИТОМ

DOI: 10.7868/S2587667821010040

АВТОРЫ:

Мишина А.В.1, 3, Мишин В.Ю.1, 2, 3, Собкин А.Л.3, Сергеева Н.В.3, Осадчая О.А.3, Пилипенко С.В.3, Епишин И.А.1

1 ФГБОУ ВО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова»,г. Москва, Россия

2 ФГБНУ «Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза», г. Москва, Россия

3 ГБУЗ «Туберкулезная клиническая больница № 3 им. профессора Г.А. Захарьина», г. Москва, Россия

ОПИСАНИЕ:

Поступила 25.10.2020

Цель исследования: изучить особенности социального статуса, клиники и диагностики у пациентов с туберкуле­зом (ТБ) на поздних стадиях ВИЧ-инфекции с иммунодефицитом и заболеванием, вызываемым новой коронави­русной инфекцией (SARS-Cov‑2) – COVID‑19 в сравнении с больными ТБ на поздних стадиях ВИЧ-инфекции с имму­нодефицитом, но без COVID‑19.

Материалы и методы. Обследовано 20 пациентов с коморбидностью COVID‑19, ТБ и ВИЧ-инфекции на поздних стадиях с иммунодефицитом (основная группа), 20 аналогичных больных без COVID‑19 составили группу сравнения.

Результаты. Коморбидность COVID‑19 и ТБ на поздних стадиях ВИЧ-инфекции с имму­нодефицитом характеризуется социальной дезадаптацией, наркозависимостью с сопутствующим вирусным гепати­том В или С и ХОБЛ, что не отличается от пациентов без COVID‑19. Дифференцировать сочетания данных болезней по клиническим и лучевым методам исследования не представляется возможным. Необходимы специальные микро­биологические и молекулярно-генетические исследования диагностического материала из респираторной системы и других органов.

Заключение. Для предотвращения заражения населения SARS-Cov‑2 необходимо активное об­следование всех больных ТБ и ВИЧ-инфекцией, состоящих на учете в кабинете противотуберкулезной помощи ВИЧ-инфицированным и противотуберкулезном диспансере (ПТД).

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ:
  1. ВИЧ-инфекция и СПИД. Клинические рекоменда­ции. Под редакцией В.В. Покровского. 4-е изда­ние, переработанное и дополненное. М.: ГЭОТАР- Медиа. – 2019. – 156 с.
  2. ВИЧ-инфекция у взрослых. Клинические рекомен­дации, утвержденные МЗ РФ. Национальная ассо­циация специалистов по профилактике, диагности­ке и лечению ВИЧ-инфекции. – 2019. – 517 с. https:// lunaids.org/wp-content/uploads/2020/01/Klinicheskie-rekomendaczii-VICH-infekcziya-u-vzroslyh‑2019-god. pdf
  3. Внебольничная пневмония МКБ 10: J13-J18. Кли­нические рекомендации Российского респира­торного общества (РРО) и Межрегиональной ассоциации по клинической микробиологии и ан­тимикробной химиотерапии (МАКМАХ). – 2018. – 88 с. http://topuch.ru/vnebolenichnaya-pnevmoniya-mkb‑10-j13-j18/index.html
  4. Временные методические рекомендации Министерства здравоохранения Российской Федера­ции. Профилактика диагностика и лечение новой коронавирусной инфекции (COVID‑19). Версия 9 (26.10.2020 года). – 235 с.
  5. Временные методические рекомендации по ока­занию противотуберкулезной помощи в услови­ях пандемии новой коронавирусной инфекции (COVID‑19). Общероссийская общественная ор­ганизация «Российское общество фтизиатров». – 2020. – 46 с.
  6. Мишина А.В., Мишин В.Ю., Собкин А.Л., Осад­чая О.А. Диссеминированный и генерализован­ный туберкулез легких и оппортунистические заболевания у больных на поздних стадиях ВИЧ- инфекции с иммуносупрессией // Туберкулез и бо­лезни легких. – Т. 96. – № 12. – С. 68–70. https://doi.org/10.21292/2075‑1230‑2018‑96‑12‑68‑70
  7. Мишин В.Ю., Мишина А.В., Эргешов А.Э., Рома­нов В.В. Диссеминированные поражения легких у больных на поздних стадиях ВИЧ-инфекции с им­муносупрессией // Вестник ЦНИИТ. – № 4. – С. 14–29. https://doi.10.7868/S25877667819040022
  8. Федеральные клинические рекомендации по диагностике и лечению туберкулеза у больных ВИЧ-инфекцией. М. – Тверь: Издательство «Триа­да». – 2014. – 56 с.
  9. Бартлетт Дж., Галлант Д., Фам П. Клинические аспекты ВИЧ-инфекции. М.: Р. Валента. – 2012. – 528 с.
  10. Blanco J., Ambrosioni J., Garcia F., Martínez E., So­riano A., Mallolas J., Miro J.M. COVID‑19 in HIV in­vestigators. COVID‑19 in patients with HIV: clinical case series. Lancet HIV, 2020, Apr 15, pii: S2352– 3018 (20) 30111‑9.
  11. Docherty A.B., Harrison E.M., Green C.A., Hard­wick H.E., Pius R., Norman L., Holden K.A., Read M., Dondelinger F., Carson G., Merson L., Lee J., Plot­kin D., Sigfrid L., Halpin S., Jackson C., Gamble C., Horby P.W., Nguyen-Van-Tam J.S., Dunning J., Open­shaw P.J.M., Baillie J.K., Semple M.G. Features of 16,749 hospitalised UK patients with COVID‑19 using the ISARIC WHO clinical characteriza­tion protocol. medRxiv preprint https://doi. org/10.1101/2020.04.23.20076042
  12. Gervasoni C., Meraviglia P., Riva A., Giacomelli A., Oreni L., Minisci D., Atzori C., Ridolfo A., Cattaneo D. Clinical features and outcomes of HIV patients with coronavirus disease 2019. Infect. Dis., 2020, May 14, pii: ciaa579. https://doi.10.1093/cid/ciaa579 [Epub ahead of print].
  13. Guo W., Ming F., Dong Yu., Zhang Q., Zhang X., Ping­zheng Mo., Yong F., Liang Ke. A survey for COVID‑19 among HIV/AIDS patients in two districts of Wuhan. The Lancet. D-20-02926. China-Manuscript. Draft- Manuscript. https://doi:10.2139/ssrn.3550029
  14. Härter G., Spinner C.D., Roider J., Bickel M., Krznar­ic I., Grunwald S., Schabaz F., Gillor D., Postel N., Mueller M.C., Müller M., Römer K., Schewe K., Hoff­mann C. COVID‑19 in people living with human im­munodeficiency virus: a case series of 33 patients. Infection. 2020, May 11. https://doi.10.1007/s15010– 020-01438-z 
  15. Karmen-Tuohy S., Carlucci P.M., Zacharioudakis I.M., Zervou F.N., Rebick G., Klein E., Reich J., Jones S., Rahimian J. Outcomes among HIV-positive patients hospitalized with COVID‑19. medRxiv. https://www. medrxiv.org/content/10.1101/2020.05.07.20094797v1
  16. Panel on opportunistic infections in HIV-infected adults and adolescents. Guidelines for the preven­tion and treatment of opportunistic infections in HIV-infected adults and adolescents: recommendations from the Centers for Disease Control and Prevention, the National Institutes of Health, and the HIV Med­icine Association of the Infectious Diseases Society of America. Chapter “Bacterial Respiratory Disease”, 2014, pp. 97–109. https://aidsinfo.nih.gov/guidelines/ html/4/adult-and-adolescent-oi-prevention-and-treat­ment-guidelines/327/bacterial-respiratory
  17. Wu Q., Chen T., Zhang H. Recovery from COVID‑19 in two patients with coexisted HIV infection. J. Med. Virol., 2020, May 13. https://doi.10.1002/jmv.26006.
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА:

коморбидность, новая коронавирусная инфекция, SARS-Cov‑2, COVID‑19, туберкулез, ВИЧ-инфек­ция, иммунодефицит, оппортунистические болезни легких.

ДЛЯ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ:

ФГБОУ ВО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова»

127473, г. Москва, ул. Делегатская, д. 20/1

ГБУЗ «Туберкулезная клиническая больница № 3 им. профессора Г.А. Захарьина»

125466, г. Москва, Куркинское шоссе, д. 29

Мишина Анастасия Владимировна – к.м.н., доцент кафедры фтизиатрии и пульмонологии, врач отделения для больных туберкулезом и ВИЧ-инфекцией

Тел.: +7 (910) 459‑18‑90

E-mail: av.mishina@yandex.ru

ФГБОУ ВО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова»

127473, г. Москва, ул. Делегатская, д. 20/1

ФГБНУ «Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза»

107564, г. Москва, Яузская аллея, д. 2

ГБУЗ «Туберкулезная клиническая больница № 3 им. профессора Г.А. Захарьина»

125466, г. Москва, Куркинское шоссе, д. 29

Мишин Владимир Юрьевич – д.м.н., профессор, зав. кафедрой фтизиатрии и пульмонологии, главный научный сотрудник отдела фтизиатрии

Тел.: +7 (910) 436‑56‑88

E-mail: mishin.vy@mail.ru

ГБУЗ «Туберкулезная клиническая больница № 3 им. профессора Г.А. Захарьина» 125466, г. Москва, Куркинское шоссе, д. 29

Собкин Александр Лазаревич – к.м.н., главный врач

Тел.: +7 (495) 572‑71‑45

E-mail: Tkb_3@mail.ru

Сергеева Наталья Васильевна – зав. отделением для больных туберкулезом и ВИЧ-инфекцией

Тел.: +7 (916) 178‑51‑60

E-mail: Tkb_3@mail.ru

Осадчая Ольга Александровна – к.м.н., зав. отделением лучевой диагностики

Тел.: +7 (901) 380‑10‑75

E-mail: Tkb_3@mail.ru

Пилипенко Светлана Викторовна – врач отделения для больных туберкулезом и ВИЧ-инфекцией

Тел.: +7 (929)586‑90‑28

E-mail: Tkb_3@mail.ru

ФГБОУ ВО «Московский государственный медико-стоматологический университет им. А.И. Евдокимова»

127473, г. Москва, ул. Делегатская, д. 20/1

Епишин Иван Александрович – ассистент кафедры фтизиатрии и пульмонологии

Тел.: +7 (999) 678‑26‑69

E-mail: brakozar@rambler.ru

МИКОБАКТЕРИОЗЫ ОРГАНОВ ДЫХАНИЯ В МЕГАПОЛИСЕ: ЛЕЧЕНИЕ И ЕГО ЭФФЕКТИВНОСТЬ, НАБЛЮДЕНИЕ БОЛЬНЫХ

Статья 5.Страница 38.
НАЗВАНИЕ СТАТЬИ:

МИКОБАКТЕРИОЗЫ ОРГАНОВ ДЫХАНИЯ В МЕГАПОЛИСЕ: ЛЕЧЕНИЕ И ЕГО ЭФФЕКТИВНОСТЬ, НАБЛЮДЕНИЕ БОЛЬНЫХ

DOI: 10.7868/S2587667821010052

АВТОРЫ:

Гунтупова Л.Д., Борисов С.Е.

ГБУЗ «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулезом Департамента здравоохранения города Москвы», г. Москва, Россия

ОПИСАНИЕ:

Поступила 30.11.2020

С целью совершенствования медицинской помощи населению г. Москвы при заболевании микобактериозами (МБ) проведены ретро- и проспективное исследования 165 больных в 2004–2018 гг. Для систематизации этиотропной терапии проведено детальное исследование лекарственной чувствительности (ЛЧ) нетуберкулезных микобакте­рий (НТМБ), и обнаружена широкая вариабельность спектров лекарственной устойчивости (ЛУ). Методом кластер­ного анализа предположили схему химиотерапии (ХТ) пациентов. Отметили важную роль хирургического лечения в комплексной терапии больных МБ. Отмечена зависимость эффективности лечения от некоторых клинических параметров, а хронический характер микобактериального воспаления определил длительное, иногда пожизненное наблюдение больных.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ:
  1. Елисеев П.И., Марьяндышев А.О., Тарасова И.В., Хелдал А., Хиндеракер С.Г. Диагностика и ле­чение легочного микобактериоза у пациентов с подозрением на туберкулез легких // Тубер­кулез и болезни легких. 2018. – Т. 96. – № 7. – С. 61–62.
  2. Оттен Т.Ф., Васильев А.В. Микобактериоз – СПб.: Мед. пресса, 2005. – 224 с.
  3. Перельман М.И. Национальное руководство. Фти­зиатрия – М.: ГЭОТАР–Медиа, 2007. – С. 75–91.
  4. Петрова Л.В., Мельникова Е.И., Соловьев Ю.А., Ларионова Е.Е., Севастьянова Э.В. Выявление не­туберкулезных микобактерий в республике Ма­рий Эл // Туберкулез и болезни легких. – Т. 96. – № 2. – С. 41–46.
  5. Суркова Л.К., Сагальчик Е.Р., Борисенко Т.Д., За­луцкая О.М. Распространенность нетуберкулез­ных микобактерий, проблемы диагностики и ле­чения микобактериозов // Вести национальной академии наук Беларуси. 2011. – № 2. – С. 12–18.
  6. Чучалин А.Г. Бронхоэктазы: клинические проявле­ния и диагностические программы // Пульмоноло­гия. – № 1. – С. 5–10.
  7. Шмелев Е.И., Ковалевская М.Н., Эргешов А.Э., Черноусова Л.Н., Ларионова Е.Е. Микобактери­озы в практике врача-пульмонолога: состояние проблемы // Практ. пульмонология. – № 3. – С. 37–42.
  8. Akram S.M., Bhimji S.S. Mycobacterium Chelonae. Source StatPearls [Internet], Treasure Island (FL): StatPearls Publishing, 2017, May 16.
  9. Andrejak C., Thomsen V.O., Johansen I.S. et al. Non­tuberculous pulmonary mycobacteriosis in Denmark: incidence and prognostic factors. J. Respir. Crit. Care Med., 2010, vol. 181, pp. 514–521.
  10. Argueta C., Yoder S., Holtzman A.E. et al. Isolation and identification of nontuberculous mycobacteria from foods as possible exposure sources. Food. Prot. 2000, vol. 63, no. 7, pp. 930–933.
  11. Cook J.L. Nontuberculous mycobacteria: opportunis­tic environmental pathogens for predisposed hosts. Med. Bull., 2010, vol. 96, pp. 45–59.
  12. Dai J., Chen Y., Lauzardo M. Web-accessible data­base of hsp65 sequences from Mycobacterium refer­ence strains. Clin. Microbiol., 2011, vol. 49, no. 6, pp. 2296–2303.
  13. Daley C.L., Griffith D.E. Pulmonary non-tuberculous mycobacterial infections. J. Tuberc. Lung Dis., 2010, vol. 14, no. 6, pp. 665–671.
  14. David L., Heyman М. Diseases due to other myco­bacteria. Washington: American Public Health Asso­ciation, 2004, pp. 572–573.
  15. Falkinham J.O. Nontuberculous mycobacteria in the environment. Chest. Med., 2002, vol. 23, pp. 529–551.
  16. Falkinham J.O. Ecology of nontuberculous myco­bacteria – where do human infections come from? Respir. Crit. Care Med., 2013, vol. 34, pp. 95– 102.
  17. Good R.C. From the Center for Disease Control. Iso­lation of nontuberculous mycobacteria in the United States, 1979. Infect. Dis., 1980, vol. 142, pp. 779– 783.
  18. Griffith D.Е. Aksamit T., Brown-Elliott B.A., Catanza­ro A., Daley C., Gordin F., Holland S.M., Horsburgh R., Huitt G., Iademarco M.F., Iseman M., Olivier K., Ruoss S., Fordham von Reyn C., Wallace R.J. Jr., Win­throp K. An official ATS/IDSA statement: diagnosis, treatment, and prevention of nontuberculous my­cobacterial diseases. Resp. Crit. Care Med., 2007, vol. 175, no. 4, pp. 367–416.
  19. Hatakeyama S., Ohama Y., Okazaki M. et al. Antimi­crobial susceptibility testing of rapidly growing my­cobacteria isolated in Japan. BMC Infect. Dis., 2017, vol. 17, no. 1, p. 197.
  20. Haworth C.S., Banks J., Capstick Т., Fisher A.J., Gor­such T., Laurenson I.F., Leitch A., Loebinger M.R., Milburn H.J., Nightingale M., Ormerod P., Shinga­dia D., Smith D., Whitehead N., Wilson R., Floto R.A. British Thoracic Society guidelines for the manage­ment of non-tuberculous mycobacterial pulmonary disease (NTM-PD). Thorax, 2017, vol. 72, supp., pp. ii1–ii64.
  21. Ho N., Kurashima А., Morimoto К. Epidemiology of pulmonary nontuberculous mycobacterial dis­ease, Japan. Infect. Dis., 2016, vol. 22, no. 6, pp. 1116–1117.
  22. Hoefsloot W., van Ingen J., Andrejak C., Ange­by K., Bauriaud R., Bemer P., Beylis N., Boeree M.J., Cacho J., Chihota V., Chimara E., Churchyard G., Cias R., Daza R., Daley C.L., Dekhuijzen P.N., Domin­go D., Drobniewski F., Esteban J., Fauville-Dufaux M., Folkvardsen D.B., Gibbons N., Gómez-Mampaso E., Gonzalez R., Hoffmann H., Hsueh P.R., Indra A., Ja­gielski T., Jamieson F., Jankovic M., Jong E., Ke­ane J., Koh W.J., Lange B., Leao S., Macedo R., Mannsаker T., Marras T.K., Maugein J., Milburn N.J., Mlinkó T., Morcillo N., Morimoto K., Papaventsis D., Palenque E., Paez-Peña M., Piersimoni C., Pola­nová M., Rastogi N., Richter E., Ruiz-Serrano M.J., Silva A., da Silva M.P., Simsek H., van Soolingen D., Szabó N., Thomson R., Tórtola F.T., Tortoli E., Tot­ten S.E., Tyrrell G., Vasankari T., Villar M., Walkie­wicz R., Winthrop K.L., Wagner D. Nontuberculous Mycobacteria Network European Trials Group. The geographic diversity of nontuberculous mycobacte­ria isolated from pulmonary samples: an NTM-NET collaborative study. Respir. J., 2013, vol. 42, no. 6, pp. 1604–1613.
  23. Johnson M.M., Odell J.A. Nontuberculous myco­bacterial pulmonary infections. Thorac. Dis. 2014, vol. 6, no. 3, pp. 210–220.
  24. Jones M.M., Winthrop K.L., Nelson S.D. et al. Epide­miology of nontuberculous mycobacterial infections in the U.S. Veterans Health Administration. PLoS One, 2018, vol. 13, no. 6, p. e0197976.
  25. Kendall B., Winthrop K. Update on the epidemiol­ogy of pulmonary nontuberculous mycobacterial in­fections. Respir. Crit. Care Med. 2013, vol. 34, no. 1, pp. 87–94.
  26. Ko R.E., Moon S.M., Ahn S. et al. Changing epidemi­ology of nontuberculous mycobacterial lung diseases in a tertiary referral hospital in Korea between 2001 and 2015. Korean Med. Sci., 2018, vol. 33, no. 8, p. e65.
  27. Kwon Y.S., Koh W.J., Daley C.L. Treatment of Myco­bacterium avium Complex pulmonary disease. Respir. Dis. (Seoul), 2019, vol. 82, no. 1, pp. 15–26.
  28. Lim A.Y.H., Chotirmall S.H., Fok E.T.K. et al. Profiling non-tuberculous mycobacteria in an Asian setting: characteristics and clinical outcomes of hospitalized patients in Singapore. BMC Pulm. Med., 2018, vol. 18, no. 1. DOI: 10.1186/s12890‑018‑0637‑1
  29. Nichols G., Ford T., Bartram J., Dufour A., Portaels F. Pathogenic mycobacteria in water: A guide to public health consequences, monitoring and management. World Health Organization. Lon­don, IWA Publishing, 2004.
  30. Okamori S., Asakura T., Nishimura T. et al. Natural history of Mycobacterium fortuitum pulmonary infec­tion presenting with migratory infiltrates: a case re­port with microbiological analysis. BMC Infect. Dis., 2018, vol. 18, no. 1, pp. 2892–2899.
  31. Prevots D.R., Loddenkemper R., Sotgiu G., Migliori G.B. Nontuberculous mycobacterial pulmonary disease: an increasing burden with substantial costs. Respir. J., 2017, 49, no. 4: pii: 1700374.
  32. Ringshausen F.C., Wagner D., de Roux A. et al. Prev­alence of nontuberculous mycobacterial pulmonary disease, Germany, 2009–2014. Infect. Dis., 2016, vol. 22, no. 6, pp. 1102–1105.
  33. Schoenfeld N., Haas W., Richter E., Bauer T., Boes L., Castell S., Hauer B., Magdorf K., Matthiessen W., Mauch H., Reuss A., Schenkel K., Ruesch-Gerdes S., Zabel P., Dalhoff K., Schaberg T., Loddenkemper R. Recommendations of the German Central Committee against Tuberculosis (DZK) and the German Respira­tory Society (DGP) for the Diagnosis and Treatment of Non-tuberculous Mycobacterioses. Pneumologie, 2016, vol. 70, no. 4, pp. 250–276.
  34. Shah N.M., Davidson J.A., Anderson L.F. et al. Pulmo­nary Mycobacterium avium-intracellulare is the main driver of the rise in non-tuberculous mycobacteria incidence in England, Wales and Northern Ireland, 2007–2012. BMC Infect. Dis., 2016, vol. 16, p. 195.
  35. Tortoli E. Impact of genotypic studies on mycobacte­rial taxonomy: the new mycobacteria of the 1990s. Microbiol. Rev., 2003, vol. 16, pp. 319–354.
  36. Tortoli E. Microbiological features and clinical rele­vance of new species of the Genus Mycobacterium. Microbiol. Rev., 2014, vol. 27, no. 4, pp. 727–752.
  37. Varghese В., Enani M.A., Shoukri M., et al. The first Saudi Arabian national inventory study revealed the upcoming challenges of highly diverse non-tubercu­lous mycobacterial diseases. PLoS One Negl. Trop. Dis., 2018, vol. 12, no. 5, p. e0006515. DOI: 0.1371/ journal.pntd.0006515
  38. Yoon H.J., Choi H.Y., Ki M. Nontuberculosis mycobac­terial infections at a specialized tuberculosis treat­ment centre in the Republic of Korea. BMC Infect. Dis., 2017, vol. 17, no. 1, p. 432.
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА:

микобактериоз, лекарственная чувствительность, лечение, хирургическое вмешательство, наблю­дение, эффективность лечения.

ДЛЯ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ:

ГБУЗ «Московский городской научно-практический центр борьбы с туберкулезом Департамента здравоохранения города Москвы»

107014, г. Москва, ул. Стромынка, д. 10

Гунтупова Лидия Доржиевна – к.м.н., врач-фтизиатр городского клинико-диагностического центра

Тел.: +7 (499) 161‑02‑30

Е-mail: guntupov@mail.ru

Борисов Сергей Евгеньевич – д.м.н., профессор, заместитель директора

Тел.: +7 (499) 268-50-10

Е-mail: sebarsik@gmail.com

СРАВНЕНИЕ ДИНАМИКИ РЕНТГЕНОЛОГИЧЕСКИХ ОСОБЕННОСТЕЙ ИНФИЛЬТРАТИВНОГО И ДИССЕМИНИРОВАННОГО ТУБЕРКУЛЕЗА ЛЕГКИХ ПО ДАННЫМ КТ ДИАГНОСТИКИ И ОБЗОРНОЙ РЕНТГЕНОГРАФИИ ОРГАНОВ ГРУДНОЙ КЛЕТКИ

Статья 6.Страница 50.
НАЗВАНИЕ СТАТЬИ:

СРАВНЕНИЕ ДИНАМИКИ РЕНТГЕНОЛОГИЧЕСКИХ ОСОБЕННОСТЕЙ ИНФИЛЬТРАТИВНОГО И ДИССЕМИНИРОВАННОГО ТУБЕРКУЛЕЗА ЛЕГКИХ ПО ДАННЫМ КТ ДИАГНОСТИКИ И ОБЗОРНОЙ РЕНТГЕНОГРАФИИ ОРГАНОВ ГРУДНОЙ КЛЕТКИ

DOI: 10.7868/S2587667821010064

АВТОРЫ:

Яцукова А.В.1, Бабаева И.Ю.1, Шаполовский В.С.2, Шаполовская А.С.2, Яцуков А.В.1, Жукова Д.Ю.1

1 ФГБОУ ВО «Кубанский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации, г. Краснодар, Россия

2 ФГБОУ ВО «Ростовский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации, г. Ростов-на-Дону, Россия

ОПИСАНИЕ:

Поступила 01.09.2020

Анализ эпидемической ситуации свидетельствует о позднем выявлении больных туберкулезом легких (ТБЛ), это свя­зывают как с низким уровнем настороженности по туберкулезу (ТБ), так и с ошибками врачей общей лечебной сети при диагностике ТБ. Цель исследования: сравнить динамику течения инфильтративного и диссеминированно­го ТБЛ по данным компьютерной томографии (КТ) и обзорной рентгенографии органов грудной клетки (ОГК) па­циентов с ТБЛ с оценкой особенностей рентгенологической картины заболевания, а также сравнительная оценка информативности рентгенологических методов исследования в динамике ТБЛ. Проведен ретроспективный анализ 200 историй болезни рентгенограмм и КТ ОГК пациентов с инфильтративным и диссеминированным ТБЛ. По полу­ченным данным обзорной рентгенографии и КТ ОГК делаем вывод, что применение КТ ОГК позволяет более точно, чем рентгенография, выявлять дополнительную информацию о наличии остаточных туберкулезных изменений.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ:
  1. Бабаева И.Ю., Демихова О.В., Кравченко А.В., Со­кол Л.А. Иммунный статус больных диссеминиро­ванным туберкулезом легких на разных стадиях ВИЧ-инфекции // ВИЧ-инфекция и иммуносупрессии. 2009. – Т. 1. – С. 57–58.
  2. Парпиева Н.Н., Сафаев Х.А., Юсупов Н.Э. Медико-социальный портрет больных с туберкулезом лег­ких проживающих в экологически неблагопри­ятном регионе Хорезма. Материалы VIII Съезда фтизиатров и пульмонологов Узбекистана. 2015. – С. 110.
  3. Равильоне М.К., Коробицын А.А. Ликвидация ту­беркулеза – новая стратегия ВОЗ в эру целей устойчивого развития, вклад Российской Федера­ции // Туберкулез и болезни легких. 2016. – № 11. – С. 7–17.
  4. Респираторная медицина: руководство / под ред. А.Г. Чучалина – 2-е изд. – М.: Литтерра – 2017. – Т. 1. – С. 282.
  5. Ташпулатова Ф.К., Садыков А.С. Организация диагностики туберкулеза легких на уровне первично­го звена здравоохранения. Материалы VIII Съезда фтизиатров и пульмонологов Узбекистана. 2015. – С. 43–49.
  6. Тилляшайхов М.Н. Концепция по улучшению ока­зания противотуберкулезной помощи населению Узбекистана (2011–2015 гг.). Материалы VIII Съезда фтизиатров и пульмонологов Узбекистана. 2015. – С. 3–8.
  7. Тюрин И.Е., Нейштадт А.С., Черемисин В.М. Компьютерная томография при туберкулезе органов ды­хания. С.‑Петербург. – 1998. – 235 с.
  8. Фтизиатрия: национальное руководство / под ред. М.И. Перельмана. – М.: ГЭОТАР-Медиа. – 2010. – 512 с.
  9. Global tuberculosis report 2016. Geneva, World Health Organization, p. 179.
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА:

туберкулез легких, компьютерная томография органов грудной клетки, обзорная рентгенография грудной клетки.

ДЛЯ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ:

ФГБОУ ВО «Кубанский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации

350063, Краснодарский край, г. Краснодар, ул. Митрофана Седина, д. 4

Яцукова Алина Владимировна – ассистент кафедры инфекционных болезней и фтизиопульмонологии

Тел.: +7 (918) 060‑60‑78

Е-mail: Dr.Yatsukova@yandex.ru

Бабаева Ирина Юрьевна – д.м.н., профессор кафедры инфекционных болезней и фтизиопульмонологии

Тел.: +7 (918) 191‑21‑74

Е-mail: Irenb74@mail.ru

Яцуков Александр Васильевич – ассистент кафедры лучевой диагностики, врач-рентгенолог отделения лучевой диагностики ГБУЗ «Краевой клинической больницы № 2», г. Краснодар

Тел.: +7 (918) 060‑67‑89

Е-mail: Dr.Yatsukov@yandex.ru

Жукова Диана Юрьевна – врач-ординатор кафедры инфекционных болезней и фтизиопульмонологии

Тел.: +7 (918) 686‑11‑94

Е-mail: dianazhuk11@mail.ru

ФГБОУ ВО «Ростовский государственный медицинский университет» Министерства здравоохранения Российской Федерации

344022, Ростовская область, г. Ростов-на-Дону, пер. Нахичеванский, д. 29

Шаполовский Владимир Сергеевич – врач-ординатор кафедры гематологии и трансфузиологии (с курсом клинической лабораторной диагностики, генетики и лабораторной генетики); врач клинической лабораторной диагностики

Тел.: +7 (918) 948‑21‑61

Е-mail: shapolovskiy@inbox.ru

Шаполовская Александра Сергеевна – врач-ординатор кафедры гематологии и трансфузиологии (с курсом клинической лабораторной диагностики, генетики и лабораторной генетики); врач клинической лабораторной диагностики

Тел.: +7 (918) 480‑45‑72

E-mail: ashapolovskaya@mail.ru

ХИМИОТЕРАПИЯ ТУБЕРКУЛЕЗА ОРГАНОВ ДЫХАНИЯ С ЛЕКАРСТВЕННОЙ УСТОЙЧИВОСТЬЮ МБТ У ДЕТЕЙ СТАРШЕГО ВОЗРАСТА И ПОДРОСТКОВ: НОВЫЕ ВЫЗОВЫ – НОВЫЕ РЕШЕНИЯ

Статья 7.Страница 58.
НАЗВАНИЕ СТАТЬИ:

ХИМИОТЕРАПИЯ ТУБЕРКУЛЕЗА ОРГАНОВ ДЫХАНИЯ С ЛЕКАРСТВЕННОЙ УСТОЙЧИВОСТЬЮ МБТ У ДЕТЕЙ СТАРШЕГО ВОЗРАСТА И ПОДРОСТКОВ: НОВЫЕ ВЫЗОВЫ – НОВЫЕ РЕШЕНИЯ

DOI: 10.7868/S2587667821010076

АВТОРЫ:

Панова Л.В., Овсянкина Е.С.

ФГБНУ «Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза», г. Москва, Россия

ОПИСАНИЕ:

Поступила 19.03.2020

Цель исследования: сокращение сроков лечения детей старшего возраста и подростков, больных туберкулезом (ТБ) органов дыхания с множественной и широкой лекарственной устойчивостью (МЛУ/ШЛУ) микобактерий туберкулеза (МБТ) на основе разработки персонализированных подходов к выбору режима химиотерапии (РХТ).

Материал и ме­тоды: за период с 2016 по 2019 г. проведены когортные проспективные исследования, в которые включены пациен­ты в возрасте 13–17 лет с различными формами ТБ органов дыхания с МЛУ/ШЛУ МБТ.

Результаты. На основе разра­ботки персонализированных подходов обоснованы: возможность продолжения основного курса химиотерапии (ХТ) без возвращения к интенсивной фазе ХТ по новому режиму при получении теста лекарственной чувствительности (ТЛЧ) МБТ на этапе лечения, эффективность укороченных до 12 месяцев РХТ у детей старшего возраста и подростков с ТБ органов дыхания и МЛУ/ШЛУ МБТ, алгоритм формирования укороченных РХТ пациентов с ТБ органов дыхания и МЛУ/ШЛУ МБТ у детей старшего возраста и подростков, критерии длительности ХТ ТБ органов дыхания у детей старшего возраста и подростков с впервые определенной из операционного материала МЛУ/ШЛУ МБТ.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ:
  1. Клинические рекомендации «Туберкулез у де­тей», РОФ, 2020. – 54 с. http://cr.rosminzdrav.ru/#!/ recomend/359.
  2. Нечаева О.Б. Туберкулез у детей России // Туб. и болезни легких. 2020. – Т. 98. – № 11. – С. 12–20.
  3. Туберкулез с множественной лекарственной устойчивостью возбудителя у детей и подростков в Европейском регионе ВОЗ. Экспертное мнение. ВОЗ 2020. https://apps.who.int/iris/bitstream/hand le/10665/331888/9789289054966-rus.pdf
  4. Groschel M.I., van den Boom M., Migliori G.B., Dara M. Prioritising children and adolescents in the tuberculosis response of the WHO European Region. Eur. Respir. Rev., 2019, vol. 151, no. 28, p. 180106. DOI: 10.1183/16000617.0106-2018
  5. Roadmap towards ending TB in children and ado­lescents. Second edition. WHO, 2018, 32 p. https:// www.who.int/tb/publications/2018/tb-childhoodroad­map/en/
  6. Sandgren A., Cuevas L.E., Dara M., Gie R.P. Child­hood tuberculosis: progress requires an advocacy strategy now. Eur. Respir. J., 2012, vol. 40, no. 2, pp. 294–297. DOI: 10.1183/09031936.00187711
  7. WHO consolidated guidelines on drug-resistant tu­berculosis treatment. WHO, 2019, 104 p. www.who. int/tb/publications/2019/consolidated-guidelines-drug-resistant-TB-treatment/en/
  8. WHO consolidated guidelines on tuberculosis, Module 4: Treatment – Drug-resistant tuberculosis treatment. WHO, 2020, 32 p. https://www.who.int/ publications/i/item/9789240007048
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА:

туберкулез, дети и подростки, МЛУ/ШЛУ МБТ, укороченные режимы химиотерапии, бедаквилин.

ДЛЯ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ:

ФГБНУ «Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза»

107564, г. Москва, ул. Яузская аллея, д. 2

Панова Людмила Владимировна – д.м.н., ведущий научный сотрудник детско-подросткового отдела

Тел.: +7 (499) 785‑90‑05

E-mail: detstvocniit@mail.ru

Овсянкина Елена Сергеевна – д.м.н., профессор, главный научный сотрудник, зав. детско-подростковым отделом

Тел.: +7 (499) 785‑90‑05

E-mail: detstvocniit@mail.ru

ВОЗМОЖНОСТИ КАРДИОПРОТЕКТИВНОЙ ТЕРАПИИ: В ФОКУСЕ ПАЦИЕНТЫ С ТУБЕРКУЛЕЗОМ И ХРОНИЧЕСКОЙ ОБСТРУКТИВНОЙ БОЛЕЗНЬЮ ЛЕГКИХ

Статья 8.Страница 65.
НАЗВАНИЕ СТАТЬИ:

ВОЗМОЖНОСТИ КАРДИОПРОТЕКТИВНОЙ ТЕРАПИИ: В ФОКУСЕ ПАЦИЕНТЫ С ТУБЕРКУЛЕЗОМ И ХРОНИЧЕСКОЙ ОБСТРУКТИВНОЙ БОЛЕЗНЬЮ ЛЕГКИХ

DOI: 10.7868/S2587667821010088

АВТОРЫ:

Багишева Н.В.1, Мордык А.В.1, Моисеева М.В.1, Нестерова К.И.1, Небесная Е.Ю.1, Филипенко Г.В.2, Ароян А.Р.1, 2, Батищева Т.Л.2, Андреева И.А.2

1 ФГБОУ ВО «Омский государственный медицинский университет» Минздрава России, г. Омск, Россия

2 БУЗОО «Клинический противотуберкулезный диспансер», г. Омск, Россия

ОПИСАНИЕ:

Поступила 19.09.2020

В статье приводится оценка применения различных комбинаций кардиопротективных препаратов с целью выявле­ния наиболее эффективных у пациентов с наличием сочетанной бронхолегочной и сердечно-сосудистой патологии. В исследовании приняли участие 80 пациентов, проходивших лечение по поводу туберкулеза (ТБ) легких, имеющих в анамнезе хроническую обструктивную болезнь легких (ХОБЛ) и признаки хронической сердечной недостаточности (ХСН) с сохраненной фракцией выброса (ФВ). Пациенты были разделены на 4 группы в зависимости от выбран­ной комбинации препаратов. Сравнительный анализ, проводимый по клиническим и инструментальным параметрам, указал на необходимость внедрения индивидуализированного подхода в назначении терапии в связи с поливалент­ностью проявлений трех нозологий.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ:
  1. Гельцер Б.И., Бродская Т.А., Невзорова В.А. Ар­териальная ригидность и хроническая обструк­тивная болезнь легких: патофизиологические взаимосвязи и клиническое значение // Терапевти­ческий архив. 2008. – № 11. – С. 89–94.
  2. Гиляревский С.Р., Голшмид М.В., Кузьмина И.М. Роль антагонистов рецепторов альдостерона в профилактике и лечении сердечно-сосудистых и почечных заболеваний: реальность и перспекти­вы // Русский медицинский журнал. 2014. – № 23. – С. 1689–1693.
  3. Глобальная борьба с туберкулезом 2011 год. Всемирная организация здравоохране­ния URL: https://apps.who.int/iris/bitstream/hand le/10665/44728/9789241564380_eng.pdf?sequence=1 (дата обращения: 02.07.2020).
  4. Даниляк И.Г. Хронические обструктивные забо­левания легких и ишемическая болезнь сердца // Пульмонология. 1992. – № 2. – С. 22–23.
  5. Евдокимов В.В., Евдокимова А.Г., Ющук Е.Н. Осо­бенности клинико-функциональных изменений у больных с ХСН ишемического генеза в сочета­нии с ХОБЛ // Русский медицинский журнал. 2019. – № 12. – С. 8–13.
  6. Карпов Ю.А., Сорокин Е.В. Антагонисты минера­локортикоидных рецепторов при хронической сердечной недостаточности: показания к назна­чению и выбор препарата в свете современных знаний // Атмосфера. Новости кардиологии. 2015. – № 1. – С. 21–26.
  7. Мареев В.Ю., Фомин И.В., Агеев Ф.Т. Клинические рекомендации ОССН – РКО – РНМОТ. Сердечная недостаточность: хроническая (ХСН) и острая де­компенсированная (ОДСН). Диагностика, профи­лактика и лечение // Кардиология. 2018. – Т. 58. – № 6S. – С. 8–158.
  8. Мареев В.Ю., Фомин И.В., Агеев Ф.Т. Клинические рекомендации. Хроническая сердечная недоста­точность // Сердечная недостаточность. 2017. – Т. 18. – № 1. – С. 3–40.
  9. Минушкина Л.О., Затейщикова А.А., Хотченко­ва Н.В. Активность ренин-альдостероновой сис­темы и особенности структуры и функции левого желудочка у больных артериальной гипертонией // Кардиология. 2000. – № 9. – С. 23–27.
  10. Моисеева М.В., Багишева Н.В., Мордык А.В., Ива­нова О.Г., Иванченко А.А., Нажмутдинова А.А., Шамшева Е.В., Мордык Д.И. Эхокардиографи­ческие особенности пациентов с хронической обструктивной болезнью легких и впервые вы­явленным туберкулезом // Врач. 2019. – Т. 30. – № 2. – С. 48–51.
  11. Ощепкова Е.В., Лазарева Н.В., Салтыкова Д.Ф., Те­рещенко С.Н. Первые результаты Российского ре­гистра хронической сердечной недостаточности // Кардиология. 2015. – Т. 55. – № 5. – С. 22–28.
  12. Фомин И.В. Хроническая сердечная недостаточ­ность в Российской Федерации: что сегодня мы знаем и что должны делать // Российский кардио­логический журнал. 2016. – № 8. – С. 7–13.
  13. Campo G., Pavasini R., Malagu M. Chronic obstruc­tive pulmonary disease and ischemic heart disease comorbidity: overview of mechanisms and clinical management. Cardiovasc. Drugs Ther., 2015, vol. 29, no. 2, pp. 147–155.
  14. Canepa M., Temporelli P.L., Rossi A. Prevalence and prognostic impact of chronic obstructive pulmonary disease in patients with chronic heart failure: data from the GISSI-HF Trial. Cardiology, 2017, vol. 136, no. 2, рр. 128–137.
  15. Hansell A.L., Walk J.A., Soriano J.B. What do chron­ic obstructive pulmonary disease patients die from? A multiple cause coding analysis. Eur. Respir. J., 2003, vol. 22, pp. 809–814.
  16. Hawkins N.M., Huang Z., Pieper K.S. Chronic obstruc­tive pulmonary disease is an independent predictor of death but not atherosclerotic events in patients with myocardial infarction: analysis of the Valsar­tan in Acute Myocardial Infarction trial (VALIANT). European Journal of heart failure, 2009, vol. 11, pp. 292–298.
  17. Iqbal J., Parviz Y., Pitt B. et al. Selection of a miner­alocorticoid receptor antagonist for patients with hy­pertension or heart failure. Eur. J. Heart Fail., 2014, vol. 16, pp. 143–150.
  18. Owan T.E., Hodge D.O., Herges R.M., Jacobsen S.J., Roger V.L., Redfield M.M. Trends in prevalence and outcome of heart failure with preserved ejection fraction. New England Journal of Medicine, 2006, vol. 355, no. 3, pp. 251–259.
  19. Wouters E.F., Creutzberg E.C., Schols A.M. Systemic effects in COPD. Chest, 2002, vol. 121, pp. 127–130.
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА:

туберкулез, хроническая обструктивная болезнь легких, хроническая сердечная недостаточность, сочетанная патология, эхокардиография, кардиопротективная терапия.

ДЛЯ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ:

ФГБОУ ВО «Омский государственный медицинский университет» Минздрава России 644099, г. Омск, ул. Ленина, д. 12

Багишева Наталья Викторовна – к.м.н., доцент кафедры внутренних болезней и доликлинической терапии

Тел.: +7 (923) 672‑00‑20

E-mail: ppi100@mail.ru

Мордык Анна Владимировна – д.м.н., профессор, зав. кафедрой фтизиатрии, фтизиохирургии и инфекционных болезней

Тел.: +7 (913) 649‑21‑19

E-mail: amordik@mail.ru

Моисеева Марина Викторовна – к.м.н., ассистент кафедры внутренних болезней и поликлинической терапии

Тел.: +7 (913) 607‑43‑42

E-mail: lisnyak80@mail.ru

Нестерова Климентина Ивановна – д.м.н., профессор кафедры оториноларингологии

Тел.: +7 (904) 581‑91‑55

E-mail: nesterov_ivan@mail.ru

Небесная Екатерина Юрьевна – ординатор кафедры госпитальной терапии, эндокринологии

Тел.: +7 (913) 689‑10‑59

E-mail: nebesnay_katya97@mail.ru

БУЗОО «Клинический противотуберкулезный диспансер»

644058, г. Омск, ул. Целинная, д. 2

Ароян Анна Робертовна – врач-фтизиатр, ассистент кафедры фтизиатрии, фтизиохирургии и инфекционных болезней

Тел.: +7 (951) 426‑27‑39

E-mail: kptd_mail@minzdrav.omskportal.ru

Батищева Татьяна Леонидовна – зам. главного врача по медицинской части

Тел.: +7 (3812) 42‑44‑86

E-mail: kptd_mail@minzdrav.omskportal.ru

Андреева Ирина Александровна – зав. лечебно-диагностическим отделением

Тел.: +7 (3812) 42‑22‑15

E-mail: kptd_mail@minzdrav.omskportal.ru

Филипенко Галина Викторовна – врач функциональной диагностики

Тел.: +7 (3812) 42‑22‑15

E-mail: kptd_mail@minzdrav.omskportal.ru

ЭФФЕКТИВНОСТЬ И РЕНТАБЕЛЬНОСТЬ МАССОВОГО ПРОФИЛАКТИЧЕСКОГО ФЛЮОРОГРАФИЧЕСКОГО ОБСЛЕДОВАНИЯ НАСЕЛЕНИЯ НА ПРИМЕРЕ РЕСПУБЛИКИ САХА (ЯКУТИЯ)

Статья 9.Страница 76.
НАЗВАНИЕ СТАТЬИ:

ЭФФЕКТИВНОСТЬ И РЕНТАБЕЛЬНОСТЬ МАССОВОГО ПРОФИЛАКТИЧЕСКОГО ФЛЮОРОГРАФИЧЕСКОГО ОБСЛЕДОВАНИЯ НАСЕЛЕНИЯ НА ПРИМЕРЕ РЕСПУБЛИКИ САХА (ЯКУТИЯ)

DOI: 10.7868/S258766782101009X

АВТОРЫ:

Кравченко А.Ф., Шепелева Л.П.

ГБУ Республики Саха (Якутия) Научно-практический центр «Фтизиатрия», г. Якутск, Россия

ОПИСАНИЕ:

Поступила 26.09.2020

За период наблюдения с 2010 по 2019 г. в Республике Саха (Якутия) отмечается устойчивая тенденция к снижению на 29,04% (p < 0,001) абсолютного числа впервые выявленных больных туберкулезом (ТБ) и повышение фактического охвата выполнением флюорографического (ФЛГ) обследования населения на 23,9% (p < 0,001). Увеличение доли охвата ФЛГ обследованием населения, подлежащего, но ранее не охваченного массовым профилактическим ФЛГ осмотром, за весь период наблюдения составило 51,8% (p < 0,001). Выявление больных ТБ из числа охваченных еже­годными профилактическими ФЛГ осмотрами увеличилось на 23,05% (p < 0,001), а также самообращение пациентов из числа ранее не охваченных ФЛГ обследованием снизилось на 39,5% (p < 0,05). При сравнительном анализе охвата населения плановым ФЛГ осмотром, который утверждается Министерством здравоохранения республики, и охвата фактическими ФЛГ обследованиями подлежащего населения не установлено существенных различий (p > 0,05) как на выявление больных ТБ при профилактических ФЛГ осмотрах, так и при самообращении пациентов в медицинские организации. Темп убыли выявления флюороположительных лиц в целом по республике составил 46,5% (p < 0,001). При этом выявление различной патологии органов грудной клетки (4540,50 ± 1306,91) оказалось в 14,3 раз выше, чем туберкулеза (337,87 ± 11,85). Выявление же туберкулеза (337,87 ± 11,85) и онкопатологии (226,50 ± 15,24) при проведении массовых профилактических ФЛГ осмотрах не имели существенных различий (p > 0,05). В целом вы­явление патологии органов грудной клетки (ОГК) при проведении массовых ФЛГ осмотров на 1000 обследований, за исключением ТБ, составило 8,20 ± 2,80 случаев, в то время как ТБ – 0,57 ± 0,90 (t = 7,90; p < 0,001). Ежегодно на ФЛГ обследование населения республики, без учета накладных расходов, в среднем было затрачено 169,9 млн руб., при обследовании флюороположительных лиц на установление заболевания ТБ – 4,7 млн руб. Таким образом, стоимость выявления одного больного ТБ без учета накладных расходов составила 545,4 тыс. руб. Профилактические ФЛГ обследования населения являются малорентабельными, но позволяют мониторировать в целом эпидемиологи­ческую ситуацию по ТБ и своевременно принимать меры по ее стабилизации, косвенно отслеживать миграционные процессы населения.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ:
  1. Данилов А.Н., Морозова Т.И. Параллели между не­своевременным выявлением клинических форм ту­беркулеза легких и флюорографическими осмотрами населения // Туберкулез и болезни легких. 2015. – № 5. – С. 70–71.
  2. Горбунов А.В., Кочеткова Е.А. Некоторые аспекты состояния флюорографической службы Москвы и возможные подходы к ее реорганизации // Про­блемы туберкулеза и болезней легких. 2003. – Т. 80 – № 4. – С. 3–9.
  3. Корецкая Н.М., Наркевич А.Н. Впервые выявлен­ный туберкулез легких у лиц, соблюдавших и на­рушающих регламентированные сроки флюоро­обследования в эпидемически неблагополучном регионе // Туберкулез и болезни легких. 2013. – Т. 90. – № 9. – С. 21–24.
  4. Кучеров А.Л., Ильичева Е.Ю. Пути повышения эф­фективности противотуберкулезных мероприятий и сокращение затрат на их проведение // Пробле­мы туберкулеза и болезней легких. 2003. – Т. 80. – № 4. – С. 7–11.
  5. Лугинова Е.Ф., Шепелева Л.П., Гурьева О.И. Тен­денция туберкулеза у детей в Республике Саха (Якутия) за 10-летний период на фоне внедрения новых технологий диагностики // Туберкулез и бо­лезни легких. 2017. – Т. 95. – № 1. – С. 3–9.
  6. Нечаева О.Б., Стерликов С.А. Порядок проведе­ния профилактических рентгенологических иссле­дований органов грудной клетки в Российской Фе­дерации: метод. рекомендации. 2014. – М.: РИО «ЦНИИОИЗ» МЗ РФ. – 28 с.
  7. Об активном выявлении больных туберкулезом в Республике Саха (Якутия): постановление глав­ного санитарного врача по Республике Саха (Яку­тия) от 24.07.2012 г. № 5 [Электронный ресурс]. Режим доступа: https://base.garant.ru/26733153/ (Дата обращения 18 августа 2020 г.)
  8. Об утверждении порядка и сроков проведения профилактических медицинских осмотров гра­ждан в целях выявления туберкулеза: приказ Министерства здравоохранения Российской Фе­дерации № 124н от 21 марта 2017. [Электрон­ный ресурс]. Режим доступа: http://base.garant.ru/ 71688450/#friends (Дата обращения 18 августа 2020 г.)
  9. Организация выявления туберкулеза среди на­селения Республики Саха (Якутия): инструкция / Составители: Кравченко А.Ф., Винокурова М.К., Лугинова Е.Ф. и др.; ГБУ РС (Я) НПЦ «Фтизиатрия». – Якутск, 2018. –39 с. [Электронный ресурс]. Режим доступа: http://ftiziatria.ykt.ru/wp-content/ uploads/Инструкция-по-выявлению-ТБ.pdf (Дата обращения 18 августа 2020 г.)
  10. Резолюция WHА 67.1. Глобальная стратегия и цели в области профилактики, лечения и борьбы с туберкулезом на период после 2015 г. Шестьде­сят седьмая сессия Всемирной Ассамблеи здраво­охранения, Женева, 19–24 мая 2014 г. Резолюции и решения. Приложения. [Электронный ресурс]. Режим доступа: https://www.who.int/tb/post2015_ strategy/ru/ (Дата обращения 18 августа 2020 г.)
  11. Скрининговые обследования у детей и подрост­ков с целью выявления туберкулезной инфек­ции: метод. руководство. Общероссийская об­щественная организация «Российское общество фтизиатров/Ассоциация фтизиатров». 2018. – 39 с. [Электронный ресурс]. Режим доступа: http:// medradiology.moscow/d/1364488/d/skriningovoye_ obsledovaniye_detey_i_podrostkov_s_tselyu_2018. pdf (Дата обращения 18 августа 2020 г.)
  12. Тырылгин М.А. Туберкулез. Эпидемиология. Фак­торы риска. Основы выявления (на модели ре­гиона Якутии). 1995. – Якутск: ЯНЦ СО РАН ГУП «Полиграфист». – 191 с.
  13. Тырылгин М.А. Методика организации селектив­ного активного выявления туберкулеза в терри­ториях Крайнего Севера: метод. рекомендации. 1991. – М. – 20 с.
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА:

туберкулез, флюорография, массовое флюорографическое обследование, финансовые затраты на обследование, стоимость обследования.

ДЛЯ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ:

ГБУ Республики Саха (Якутия) «Научно-практический центр «Фтизиатрия»

677015, г. Якутск, ул. П. Алексеева, д. 93

Кравченко Александр Федорович – д.м.н., зам. директора по медицинской помощи в амбулаторных условиях

Тел.: +7 (924) 660‑99‑02

Е-mail: alex220560@yandex.ru

Шепелева Лариса Петровна – д.м.н., зав. отделением лучевой диагностики

Тел.: +7 (914) 289‑94‑76

E-mail: shepelevalp@mail.ru

МЕТОДЫ ИДЕНТИФИКАЦИИ МИКОБАКТЕРИЙ

Статья 10.Страница 87.
НАЗВАНИЕ СТАТЬИ:

МЕТОДЫ ИДЕНТИФИКАЦИИ МИКОБАКТЕРИЙ

DOI: 10.7868/S2587667821010106

АВТОРЫ:

Ларионова Е.Е., Андреевская С.Н., Смирнова Т.Г., Севастьянова Э.В., Черноусова Л.Н.

ФГБНУ «Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза», г. Москва, Россия

ОПИСАНИЕ:

Поступила 03.01.2021

Приведен обзор методик, применяемых для идентификации микроорганизмов, принадлежащих к микобактериям туберкулезного комплекса и нетуберкулезных микобактерий. Описаны технологические особенности применяе­мых методов идентификации. Предложен порядок действий исполнителя для решения задачи по идентификации микобактерий.

Работа выполнена в рамках темы НИР № 0515-2019-0015 «Формирование лекарственной устойчивости микобактерий и соматических клеток к противотуберкулезным препаратам».

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ:
  1. Севастьянова Э.В., Ларионова Е.Е., Андриев­ская И.Ю. Выявление микобактерий методом микро­скопии препаратов, окрашенных по Цилю–Ниль­сену. Часть 1. Для микроскопии приготовление и окрашивание препаратов // Вестник ЦНИИТ. 2019. – № 1. – C. 100–108.
  2. Севастьянова Э.В., Ларионова Е.Е., Андриев­ская И.Ю. Выявление микобактерий методом ми­кроскопии препаратов, окрашенных по Цилю– Нильсену. Часть 2. Микроскопическое исследова­ние препаратов // Вестник ЦНИИТ. 2019. – № 2. – С. 81–89.
  3. Черноусова Л.Н., Пузанов В.А., Андреевская С.Н., Смирнова Т.Г., Ларионова Е.Е., Попов С.А. Лабо­раторная диагностика туберкулеза. Методические материалы к проведению цикла тематического усовершенствования / Под редакцией проф. Еро­хина В.В. М. – 2012. – 707 с.
  4. Черноусова Л.Н., Севастьянова Э.В., Ларионо­ва Е.Е., Смирнова Т.Г., Андреевская С.Н., По­пов С.А., Журавлев В.Ю., Пузанов В.А., Марьяндышев А.О., Вахрушева Д.В., Кравченко М.А., Сафонова С.Г., Васильева И.А., Эргешов А.Э. Фе­деральные клинические рекомендации по орга­низации и проведению микробиологической и мо­лекулярно-генетической диагностики туберкулеза. РОФ. – М. – 2015. – 35 с.
  5. Abdeldaim G., Svensson E., Blomberg J., Herrmann B. Duplex detection of the Mycobacterium tuberculo­sis complex and medically important non-tuberculo­sis mycobacteria by real-time PCR based on the rnpB gene. APMIS, 2016, vol. 124, no. 11, pp. 991–995.
  6. Brend A.J., Mugo D., Musyimi R. Scott J.A.G. et al. Performance of the MGIT TBc identification test and meta-analysis of MPT64 assays for identification of the Mycobacterium tuberculosis Complex in liquid culture. Journal of Clinical Microbiology, 2011, vol. 49, no. 12, pp. 4343–4346.
  7. Chen J.H., Cheng V.C., She K.K., Yam W.C., Yuen K.Y. Application of a dual target PCRhigh resolution melting (HRM) method for rapid nontuberculous myco­bacteria identification. Microbiol. Methods, 2017, vol. 132, pp. 1–3.
  8. European Centre for Disease Prevention and Control. Handbook on TB laboratory diagnostic methods for the European Union, Stockholm, ECDC, 2016, 114 p.
  9. Favez G. Lung diseases due to atypical mycobacteria. Med. Wochenschr., 1975, vol. 105, no. 31, pp. 987–991.
  10. García-Martos P., García-Agudo L., Rodríguez-Jimé­nez M.J., Rodríguez-Iglesias M. Rapid identification of Mycobacterium tuberculosis complex from broth cultures by immunochromatographic assay. Esp. Quimioter., 2010, vol. 23, no. 4, pp. 206–209.
  11. Gomathi N.S., Devi S.M., Rvindra Sondalagere Lak­shmi, Selvakumar Nagamiah et al. Capilia test for identification of Mycobacterium tuberculosis in MGIT (TM)-positive cultures. The International Journal of Tuberculosis and Lung Disease, 2012, vol. 16, no. 6, pp. 788–792.
  12. Gopinath K., Singh S. Multiplex PCR assay for simul­taneous detection and differentiation of Mycobacte­rium tuberculosis, Mycobacterium avium complexes and other Mycobacterial species directly from clinical specimens. Appl. Microbiol., 2009, vol. 107, no. 2, pp. 425–435.
  13. Hong Y.J., Chung Y.H., Kim T.S., Song S.H., Park K.U., Yim J.J., Song J., Lee J.H., Kim E.C. Usefulness of three-channel multiplex real-time PCR and melting curve analysis for simultaneous detection and identi­fication of the Mycobacterium tuberculosis complex and nontuberculous mycobacteria. Clin. Microbiol., 2011, vol. 49, pp.3963–3966.
  14. Luna F.F.-A., Ruiz P., Gutierrez J., Casal M. Evaluation of the GenoType mycobacteria direct assay for de­tection of Mycobacterium tuberculosis complex and four atypical mycobacterial species in clinical sam­ples. Clin. Microbiol., 2006, vol. 44, pp. 3025–3027.
  15. Middlebrook G., Cohn M.L. Bacteriology of tuberculo­sis laboratory methods. J. Public Health Nations Health., 1958, vol. 48, no. 7, pp. 844–853.
  16. Richardson E.T., Samson D., Banaei N. Rapid identi­fication of Mycobacterium tuberculosis and nontu­berculous mycobacteria by multiplex, real-time PCR. Clin. Microbiol., 2009, vol. 47, pp. 1497–1502.
  17. Shrestha N.K., Tuohy M.J., Hall G.S., Reischl U., Gor­don S.M., Procop G.W. Detection and differentiation of Mycobacterium tuberculosis and nontuberculous mycobacterial isolates by real-time PCR. Clin. Micro­biol., 2003, vol. 41, pp. 5121–5126.
  18. Ustinova V.V., Smirnova T.G., Sochivko D.G., Var­lamov D.A., Larionova E.E., Andreevskaya S.N., An­drievskaya I.Yu., Kiseleva E.A., Chernousova L.N., Ergeshov A. New assay to diagnose and differentiate between Mycobacterium tuberculosis complex and nontuberculous mycobacteria. Tuberculosis, 2019, vol. 114, pp. 17–23.
  19. Global tuberculosis report. Geneva, WHO, 2019.
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА:

микобактерии, питательные среды, культивирование, идентификация, молекулярно-биологические методы.

ДЛЯ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ:

ФГБНУ «Центральный научно-исследовательский институт туберкулеза»

107564, г. Москва, Яузская аллея, д. 2

Ларионова Елена Евгеньевна – к.б.н., старший научный сотрудник отдела микробиологии

Тел.: +7 (499) 785‑90‑91

Е-mail: larionova_lena@mail.ru

Андреевская Софья Николаевна – к.м.н., старший научный сотрудник отдела микробиологии

Тел.: +7 (499) 785‑90‑91

Е-mail: andsofia@mail.ru

Смирнова Татьяна Геннадьевна – к.м.н., зав. отделом микробиологии

Тел.: +7 (499) 785‑90‑91

Е-mail: s_tatka@mail.ru

Севастьянова Элина Викторовна – д.б.н., ведущий научный сотрудник отдела микробиологии

Тел.: +7 (499) 785‑90‑91

Е-mail: elinasev@yandex.ru

Черноусова Лариса Николаевна – д.б.н. профессор, главный научный сотрудник отдела микробиологии

Тел.: +7 (499) 785‑90‑91

Е-mail: lchernousova@mail.ru

К 70-ЛЕТИЮ СО ДНЯ РОЖДЕНИЯАЛЕКСАНДРА СОЛОМОНОВИЧА АПТА

Статья 11.Страница 99.
НАЗВАНИЕ СТАТЬИ:

К 70-ЛЕТИЮ СО ДНЯ РОЖДЕНИЯАЛЕКСАНДРА СОЛОМОНОВИЧА АПТА

АВТОРЫ: 
ОПИСАНИЕ:

2 января 2021 г. исполнилось 70 лет Александру Соломоновичу Апту – доктору биоло­гических наук, профессору, заведующему лабо­раторией иммуногенетики ФГБНУ «ЦНИИТ».

Александр Соломонович родился в Москве. С 1968 по 1972 г. он учился на кафедре гене­тики биофака МГУ, в 1980 г. закончил биофак МГЗПИ. В 1972–1978 гг. он работал лаборантом в Институте общей генетики АН СССР, а в янва­ре 1979 г. был принят на должность лаборан­та в ЦНИИТ. В 1984 г. А.С. Апт защитил канди­датскую диссертацию, в 1991 г. – докторскую. С 1998 г. он заведует лабораторией иммуноге­нетики, в 2002 г. ему было присвоено ученое звание профессора по специальности «иммунология».

А.С. Апт – один из ведущих мировых специалистов в области генетики и иммунологии ту­беркулеза, а также генетики главного комплекса тканевой совместимости – основного регулятора ключевых реакций иммунитета. Возглавляемая им лаборатория ведет исследования в несколь­ких направлениях. Первое из них – это коли­чественная генетика контроля туберкулез­ной инфекции в экспериментальных моделях. А.С. Аптом был сформулирован принцип неза­висимого генетического контроля чувствитель­ности и резистентности к туберкулезу, который позволил применить разные методы классиче­ской генетики, молекулярной иммунологии, па­тологии и экспрессии генов для идентификации локусов, контролирующих тяжесть течения за­болевания, иммунный ответ на инфекцию и фе­нотипические характеристики легочной пато­логии. Международный коллектив ученых под руководством А.С. Апта первым в мире (работы опубликованы в 1999–2003 гг.) провел полный геномный скрининг на наследование у мышей тяжести заболевания, вызванного микобактери­ей туберкулеза. Эти работы получили высокую оценку в ведущих центрах мира, занимающихся общей и частной иммуногенетикой инфекций. Под руководством А.С. Апта была проведена многолетняя работа по выведению лаборатор­ных животных с серьезными различиями по тя­жести течения заболевания.

Второе направление исследований лабора­тории, руководимой А.С. Аптом, – выяснение роли в иммунном ответе на микобактерии мало изученных популяций клеток иммунной системы и цитокинов. Под руководством А.С. Апта была выполнена пионерская работа, позволившая по­нять ранее не известную роль интерлейкина‑11 при туберкулезе. Эти работы, опубликованные в ведущих мировых научных журналах, не имеют аналогов.

Третье направление работы – совершенст­вование моделей экспериментальных внутри­клеточных инфекций. Обоснование правильно­го подбора линий экспериментальных животных, т.е. учет генетики хозяина, как и работа с раз­ными по вирулентности штаммами микроорга­низмов, позволила впервые получить иммуноло­гические характеристики разных типов течения инфекции и развития воспаления.

А.С. Апт постоянно выступает партнером в разных международных проектах, приглаша­ется на все важные конференции по иммуноло­гии и генетике инфекций, а также вакцинологии. В течение 18 лет А.С. Апт является постоянным членом (faculty) российско-германского форума Коха–Мечникова, который проводит ежегодные международные конференции по проблемам туберкулеза и молекулярной иммунологии. А.С. Апт входит в редколлегии нескольких науч­ных журналов, является экспертом РАН, РФФИ и РНФ.

Педагогическая деятельность А.С. Апта так­же отвечает самым высоким критериям. Будучи ведущим профессором ФГБНУ «ЦНИИТ», он ру­ководит научной деятельностью не только ла­боратории, но и многочисленных учеников. Под его руководством выполнено 5 докторских и 9 кандидатских диссертаций. Некоторые его ученики в настоящее время занимают ведущие позиции в таких центрах, как Boston University, University of Pennsylvania, McGill University. В период между 2011 и 2018 гг. А.С. Апт читал спецкурс по иммуногенетике на кафедре имму­нологии биофака МГУ.

А.С. Аптом опубликовано более 200 научных работ, более 100 из которых отражены в основ­ной медико-биологической базе данных Pubmed.

     Александр Соломонович не только ученый с мировым именем, у него двое взрослых детей, четверо внуков.

     Коллеги и руководство ФГБНУ «ЦНИИТ» от всей души поздравляют Александра Соломоновича с 70-летием и желают ему здоровья, счастья и дальнейшей плодотворной работы.

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ: 
КЛЮЧЕВЫЕ СЛОВА: 
ДЛЯ КОРРЕСПОНДЕНЦИИ: